一、分子標(biāo)記的概述廣義的分子標(biāo)記(molecularmarker)是指可遺傳的并可檢測(cè)的DNA序列或蛋白質(zhì)。蛋白質(zhì)標(biāo)記包括種子貯藏蛋白和同工酶（指由一個(gè)以上基因位點(diǎn)編碼的酶的不同分子形式）及等位酶（指由同一基因位點(diǎn)的不同等位基因編碼的酶的不同分子形式）。狹義的分子標(biāo)記概念只是指DNA標(biāo)記，而這個(gè)界定現(xiàn)在被廣泛采納：能反映生物個(gè)體或種群間基因組中某種差異特征的DNA片段，它直接反映基因組DNA間的差異。第一講分子標(biāo)記技術(shù)一、分子標(biāo)記的概述廣義的分子標(biāo)記(molecularmar1DNA指紋分析研究是一種重要的分子標(biāo)記技術(shù)，它包括RFLP（restrictionfragmentlengthpolymorphism）、RAPD（randomlyamplifiedpolymorphicDNA）、AFLP（amplifiedfragmentlengthpolymorphism）、SSR（simplesequencerepeat）和ISSR（inter-simplesequencerepeat）等這些在PCR基礎(chǔ)上發(fā)展起來(lái)的檢測(cè)DNA多態(tài)性的分子標(biāo)記技術(shù)。DNA指紋分析研究是一種重要的分子標(biāo)記技術(shù)，它包括RFLP（2

分子標(biāo)記的優(yōu)越性表現(xiàn)為：（1）分子信息是可遺傳的，而只有在遺傳上可傳遞的屬性才能提供評(píng)估系統(tǒng)發(fā)育的信息；（2）數(shù)量極多，遍布整個(gè)基因組，可檢測(cè)座位幾乎無(wú)限；（3）分子標(biāo)記能提供共同的尺度；（4）分子數(shù)據(jù)能將從共同祖先遺傳下來(lái)的同源性和由于趨同進(jìn)化從不同祖先演變而來(lái)的相似性區(qū)分開(kāi)來(lái)表現(xiàn)為中性，不影響目標(biāo)性狀的表達(dá)；（5）任何生物有機(jī)質(zhì)包括動(dòng)物、植物和微生物有許多共同的分子屬性，因此分子數(shù)據(jù)可提供共同尺度來(lái)直接比較任何有機(jī)體任何分類(lèi)層次之間相對(duì)水平的遺傳變異；（6）分子標(biāo)記技術(shù)可應(yīng)用于各個(gè)生物門(mén)類(lèi)，并都可用于比較和綜合分析。分子標(biāo)記的優(yōu)越性表現(xiàn)為：（1）分子信息是3分子標(biāo)記的選擇理想的分子標(biāo)記應(yīng)該符合的標(biāo)準(zhǔn)是：多態(tài)性高；共顯性遺傳，在二倍體生物中能區(qū)分純合與雜合狀態(tài)；在基因組中頻繁出現(xiàn)，甚至貫穿分布于整個(gè)基因組；選擇中性；容易獲得；容易操作，自動(dòng)化程度高；重復(fù)性好；所獲得的數(shù)據(jù)能進(jìn)行交流和比較。分子標(biāo)記的選擇理想的分子標(biāo)記應(yīng)該符合的標(biāo)準(zhǔn)是：多態(tài)性高；共顯4二、蛋白質(zhì)標(biāo)記在蛋白質(zhì)多態(tài)性研究基礎(chǔ)上發(fā)展起來(lái)的分子標(biāo)記技術(shù)稱(chēng)為蛋白質(zhì)標(biāo)記，最常用的技術(shù)是蛋白質(zhì)電泳及與其配套的專(zhuān)一性染色，如曾經(jīng)廣為采用的等位酶分析，是通過(guò)同一基因位點(diǎn)上不同等位基因編碼的同種酶的不同分子形式，使得酶譜分析具有相關(guān)的遺傳學(xué)意義，酶譜的變化反應(yīng)了等位基因和位點(diǎn)的變化。等位酶技術(shù)為植物的種群遺傳學(xué)和進(jìn)化研究作出了重要的貢獻(xiàn)。但由于等位酶缺乏足夠的變異，在技術(shù)上存在一定的局限性，如今已逐漸被DNA標(biāo)記所取代。二、蛋白質(zhì)標(biāo)記在蛋白質(zhì)多態(tài)性研究基礎(chǔ)上發(fā)展起來(lái)的分子標(biāo)記技術(shù)5三、DNA分子標(biāo)記的種類(lèi)

分子標(biāo)記大多以電泳譜帶的形式表現(xiàn)，大致可分為三大類(lèi)。第一類(lèi)是以分子雜交為核心的分子標(biāo)記技術(shù)，包括：★限制性片段長(zhǎng)度多態(tài)性標(biāo)記（Restrictionfragmentlengthpolymorphism,簡(jiǎn)稱(chēng)RFLP標(biāo)記）；★DNA指紋技術(shù)（DNAFingerprinting）；★原位雜交（insituhybridization）等；三、DNA分子標(biāo)記的種類(lèi)分子標(biāo)記大多以電泳6

第二類(lèi)是以聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)（Polymerasechainreaction,簡(jiǎn)稱(chēng)PCR反應(yīng)）為核心的分子標(biāo)記技術(shù)，包括：

★隨機(jī)擴(kuò)增多態(tài)性DNA標(biāo)記（RandomamplificationpolymorphismDNA,簡(jiǎn)稱(chēng)RAPD標(biāo)記）；★簡(jiǎn)單序列重復(fù)標(biāo)記（Simplesequencerepeat,簡(jiǎn)稱(chēng)SSR標(biāo)記）或簡(jiǎn)單序列長(zhǎng)度多態(tài)性（Simplesequencelengthpolymorphism,簡(jiǎn)稱(chēng)SSLP標(biāo)記）；★擴(kuò)展片段長(zhǎng)度多態(tài)性標(biāo)記（Amplifiedfragmentlengthpolymorphism,簡(jiǎn)稱(chēng)AFLP標(biāo)記）；★序列標(biāo)簽位點(diǎn)（Sequencetaggedsites,簡(jiǎn)稱(chēng)STS標(biāo)記）；★序列特征化擴(kuò)增區(qū)域（Sequencecharacteredamplifiedregion,簡(jiǎn)稱(chēng)SCAR標(biāo)記）等；第二類(lèi)是以聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)（Polymera7

第三類(lèi)是一些新型的分子標(biāo)記，如：★單核苷酸多態(tài)性（Singlenuleotidepolymorphism,簡(jiǎn)稱(chēng)SNP標(biāo)記）；★表達(dá)序列標(biāo)簽（Expressedsequencestags,簡(jiǎn)稱(chēng)EST標(biāo)記）等。第三類(lèi)是一些新型的分子標(biāo)記，如：8四、分子標(biāo)記的特點(diǎn)（1）直接以DNA的形式表現(xiàn)，在生物體的各個(gè)組織、各個(gè)發(fā)育階段均可檢測(cè)到，不受季節(jié)、環(huán)境限制，不存在表達(dá)與否等問(wèn)題；（2）數(shù)量極多，遍布整個(gè)基因組，可檢測(cè)座位幾乎無(wú)限；（3）多態(tài)性高，自然界存在許多等位變異，無(wú)須人為創(chuàng)造；（4）表現(xiàn)為中性，不影響目標(biāo)性狀的表達(dá)；（5）許多標(biāo)記表現(xiàn)為共顯性的特點(diǎn)，能區(qū)別純合體和雜合體。四、分子標(biāo)記的特點(diǎn)（1）直接以DNA的形式9

一）限制性片段長(zhǎng)度多態(tài)性標(biāo)記（Restrictionfragmentlengthpolymorphism,RFLP）

該技術(shù)由Grodzicker等于1974年創(chuàng)立。

由于DNA分子中限制性?xún)?nèi)切酶酶切識(shí)別序列中出現(xiàn)堿基的插入、缺失、置換、倒位而導(dǎo)致酶切位點(diǎn)的增減所引起的基因型限制性片段長(zhǎng)度的差異。

五、常用的分子標(biāo)記第一類(lèi)分子標(biāo)記以分子雜交為核心的分子標(biāo)記技術(shù)一）限制性片段長(zhǎng)度多態(tài)性標(biāo)記（Restrictio10基因組DNA用已知的限制性?xún)?nèi)切酶消化后，產(chǎn)生許多大小不等的DNA片段，電泳分離、Southern印跡轉(zhuǎn)移到硝酸纖維膜上，用放射性標(biāo)記的探針與膜上變性的酶切DNA進(jìn)行雜交，放射自顯影，即可顯示出不同材料的多態(tài)性圖譜，即顯示出所分析的DNA序列間的RFLP。

基本原理基因組DNA用已知的限制性?xún)?nèi)切酶消化后，產(chǎn)生許多大小不等的D11基本步驟：DNA提取→用DNA限制性?xún)?nèi)切酶消化

→凝膠電泳分離限制性片段

→將這些片段按原來(lái)的順序和位置轉(zhuǎn)移到易操作的濾膜上

→用放射性同位素或非放射性物質(zhì)標(biāo)記的DNA作探針與膜上的DNA雜交（稱(chēng)Southern雜交）

→放射性自顯影或酶學(xué)檢測(cè)顯示出不同材料對(duì)該探針的限制性酶切片段多態(tài)性。

基本步驟：12動(dòng)植物生物體由不同的器官和組織構(gòu)成。應(yīng)選用生物體中生長(zhǎng)旺盛的器官、組織和細(xì)胞提取DNA，如植物幼苗或新長(zhǎng)出的葉片、動(dòng)物的血等。DNA提取的效果由DNA的質(zhì)量和得率來(lái)評(píng)價(jià)。選用適當(dāng)?shù)纳锲鞴俸徒M織是獲得高質(zhì)量和高得率DNA的保證。取樣后應(yīng)盡快在低溫中保存，長(zhǎng)時(shí)間保存應(yīng)在超低溫中保存。生物體樣品的選取動(dòng)植物生物體由不同的器官和組織構(gòu)成。應(yīng)選用生物體中生13作為DNA提取的開(kāi)始，多細(xì)胞的生物體樣品首先需要經(jīng)過(guò)研磨，使樣品破碎。然后樣品粉末再通過(guò)裂解液把細(xì)胞裂解。裂解液通常是由TrisTris（hydroxymethyl）aminomethane，即三羥基甲基氨基甲烷緩沖液加裂解劑組成，如SDS（Sodiumdodecylsulfate）即十二烷基磺酸鈉、CTAB（Hexadecyltrimethylammoniumbromide）即十六烷基三甲基溴化銨等。細(xì)胞的裂解作為DNA提取的開(kāi)始，多細(xì)胞的生物體樣品首先14

通常使用能使蛋白質(zhì)變性的試劑，如醋酸鉀、醋酸鈉、氯仿等。

通常使用RNA酶。蛋白質(zhì)的沉淀RNA的消化蛋白質(zhì)的沉淀RNA的消化15通常使用冰凍的異丙醇（2-ropanol）、70%乙醇等。

通常使用TE緩沖液（10mMTris，1mMEDTA，pH8.0，滅菌）。EDTA（didodiumethylenediaminetetra-acetate）即乙二胺四乙酸。

DNA沉淀DNA溶解通常使用冰凍的異丙醇（2-ropanol）、16電泳用的凝膠由瓊脂糖（agarose）制備，瓊脂糖的濃度通常為0.9-1.0%。酶切后的DNA樣品通過(guò)電泳，使DNA片段分離,并按分子量的大小排列。電泳電泳用的凝膠由瓊脂糖（agarose）制備，瓊17DNA從凝膠轉(zhuǎn)移到特制的雜交膜上，常用HybondN+（Amersham）的尼龍膜。

凝膠的處理：脫嘌呤處理：0.25MHCl變性處理：0.4MNaOH

DNA轉(zhuǎn)移：轉(zhuǎn)移液：0.4MNaOH。洗膜：洗膜液：2xSSC緩沖液

雜交膜的制備DNA從凝膠轉(zhuǎn)移到特制的雜交膜上，常用Hyb18用于RFLP分析的探針（probe）是DNA片段，長(zhǎng)度約0.5-2.5kb。探針的來(lái)源有：基因組的隨機(jī)片段、cDNA等。探針以克隆的方式保存，以質(zhì)粒（plasmid）為載體，如pUC19等，通過(guò)大腸桿菌繁殖。用于RFLP分析的探針（probe）是DNA19用作載體的質(zhì)粒必須具備三個(gè)特性：

一個(gè)復(fù)制起始點(diǎn)（Ori）；

一個(gè)顯性的選擇標(biāo)記，如氨芐青霉素（ampicillin）抗性基因（Ampr）；

單一的限制性酶切位點(diǎn)。載體載體20分子標(biāo)記技術(shù)課件21利用放射性同位素（32P-dCTP）等對(duì)探針進(jìn)行標(biāo)記，以跟蹤探針。同位素標(biāo)記：利用DNA聚合酶（Klenow），在DNA復(fù)制的過(guò)程中，把32P-dCTP合成到DNA片段上。探針的標(biāo)記(labeling)利用放射性同位素（32P-dCTP）等對(duì)探針22雜交液+鮭精DNA(shearedsalmonspermDNA,SSSDNA)雜交液: 20XSSPE 250ml 100XDenhardt’s 50ml 10%(w/v)SDS 50ml Makeupto 1000ml

65C保溫，2小時(shí)以上。預(yù)雜交雜交液+鮭精DNA(shearedsal23 A.2XSSC,0.1%SDS,65C,20min; B.1XSSC,0.1%SDS,65C,20min; C.0.5XSSC,0.1%SDS,65C,20min把已標(biāo)記的探針加入到雜交液中，加入經(jīng)預(yù)雜交的雜交膜。65C保溫，過(guò)夜。雜交洗膜 A.2XSSC,0.1%SDS,65C,2024用塑料薄膜把已雜交的雜交膜包起來(lái)。放入暗盒中。

放入X光片，緊壓。-80C冷柜中曝光2-4天。

在暗房中取出X光片，顯影、定影、沖冼。包膜照射顯影用塑料薄膜把已雜交的雜交膜包起來(lái)。放入暗盒中。包膜照25

A無(wú)表型效應(yīng)，RFLP標(biāo)記的檢測(cè)不受環(huán)境條件和發(fā)育階段的影響。BRFLP標(biāo)記在等位基因之間是共顯性的，因此在配制雜交組合時(shí)不受雜交方式的影響。C在非等位的RFLP標(biāo)記之間不存在上位效應(yīng)，因而互不干擾。DRFLP標(biāo)記起源于基因組DNA的自身變異，在數(shù)量上幾乎不受限制。EDNA需要量大，檢測(cè)技術(shù)繁雜，難以用于大規(guī)模的育種實(shí)踐中。在植物分子標(biāo)記輔助育種中需要將RFLP轉(zhuǎn)換成以PCR為基礎(chǔ)的標(biāo)記。RFLP優(yōu)點(diǎn)

A無(wú)表型效應(yīng)，RFLP標(biāo)記的檢測(cè)不受26

但RFLP分析需要比較完善的包括多種酶切、標(biāo)記、分子雜交等技術(shù)的實(shí)驗(yàn)室，加上工作量大、成本高以及放射性的問(wèn)題，使其應(yīng)用受到了一定的限制。但RFLP分析需要比較完善的包括多種酶切27ABAB限制性?xún)?nèi)切酶位點(diǎn)與放射性探針結(jié)合部位①限制性?xún)?nèi)切酶酶切后；②電泳分離DNA片段；③轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素薄膜；④與放射性探針雜交，⑤分析陽(yáng)性條帶ABAB限制性?xún)?nèi)切酶位點(diǎn)與放射性探針①限制性?xún)?nèi)切酶酶切后；28

一）隨機(jī)擴(kuò)增多態(tài)性

（randomamplifiedpolymorphismDNA，RAPD）

RAPD是1990年由美國(guó)杜邦公司的科學(xué)家Williams和加利福尼亞生物研究所Welsh幾乎同時(shí)發(fā)展起來(lái)的建立在PCR基礎(chǔ)上的一種新型的DNA分子標(biāo)記技術(shù)。第二類(lèi)分子標(biāo)記以聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)（PCR反應(yīng)）為核心的分子標(biāo)記技術(shù)一）隨機(jī)擴(kuò)增多態(tài)性

（randomamplified29基本原理采用隨機(jī)合成的寡核苷酸（通常10bp）作PCR反應(yīng)的引物，對(duì)所研究生物基因組DNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增，經(jīng)過(guò)30－40個(gè)循環(huán)，即可得到大量的DNA片段，擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳、EB染色、紫外下顯示RAPD帶紋。基本原理采用隨機(jī)合成的寡核苷酸（通常10bp）作P30由于整個(gè)基因組存在眾多反向重復(fù)序列，因此須對(duì)每一隨機(jī)引物單獨(dú)進(jìn)行PCR。單一引物與反向重復(fù)序列結(jié)合。使重復(fù)序列之間的區(qū)域得以擴(kuò)增。引物結(jié)合位點(diǎn)DNA序列的改變以及兩擴(kuò)增位點(diǎn)之間DNA堿基的缺失、插入或置換均可導(dǎo)致擴(kuò)增片段數(shù)目和長(zhǎng)度的差異，導(dǎo)致PCR產(chǎn)物增加、缺少或發(fā)生分子量變化。若PCR產(chǎn)物增加或缺少，則產(chǎn)生RAPD標(biāo)記。

由于整個(gè)基因組存在眾多反向重復(fù)序列，因此須對(duì)每一隨機(jī)引物單獨(dú)31技術(shù)路線DNA的提取

PCR反應(yīng)

凝膠電泳

選擇隨機(jī)引物

圖譜分析

技術(shù)路線DNA的提取PCR反應(yīng)凝膠電泳選擇隨機(jī)引物圖32與RFLP的比較相同之處：都從瓊脂糖凝膠上DAN條帶的多態(tài)性來(lái)反映基因結(jié)構(gòu)上的多態(tài)性；不同之處：RFLP用限制性?xún)?nèi)切酶消化DNA，通過(guò)分析限制性酶切片端的多態(tài)性，來(lái)顯示DNA的結(jié)構(gòu)的多態(tài)性；而RAPD是利用PCR技術(shù)從擴(kuò)增的DNA片段上分析多態(tài)性。由于片段被引物選擇地?cái)U(kuò)增，并不是所有序列都擴(kuò)增，擴(kuò)增了的片斷能在凝膠上清晰地顯現(xiàn)出來(lái)，這樣就可以通過(guò)同種引物擴(kuò)增條帶的多態(tài)性，反映出模板的多態(tài)性。與RFLP的比較相同之處：都從瓊脂糖凝膠上DAN條帶的多態(tài)性33與常規(guī)PCR的比較常規(guī)PCR需要兩個(gè)引物，每個(gè)引物分子15－30個(gè)核苷酸，引物順序根據(jù)擴(kuò)增的基因兩端的順序設(shè)計(jì)，因而要進(jìn)行PCR時(shí)，必需知道待擴(kuò)增基因的順序；RAPD分析時(shí)，只需一個(gè)引物，長(zhǎng)度10個(gè)核苷酸左右，引物順序是隨機(jī)的，因而可在對(duì)被檢對(duì)象無(wú)任何分子生物學(xué)資料的情況下對(duì)其基因組進(jìn)行分析。與常規(guī)PCR的比較常規(guī)PCR需要兩個(gè)引物，每個(gè)引物分子15－34（1）不需DNA探針，設(shè)計(jì)引物也無(wú)須知道序列信息；（2）顯性遺傳（極少數(shù)共顯性），不能鑒別雜合子和純合子；（3）技術(shù)簡(jiǎn)便，不涉及分子雜交和放射性自顯影等技術(shù)；（4）DNA樣品需要量少，引物價(jià)格便宜，成本較低；（5）實(shí)驗(yàn)重復(fù)性較差，結(jié)果可靠性較低。RAPD標(biāo)記的主要特點(diǎn)（1）不需DNA探針，設(shè)計(jì)引物也無(wú)須知道序列信息；RAPD標(biāo)35RAPD的缺點(diǎn)

RAPD圖譜中某些弱帶重復(fù)性較差，而且目前該法在引物長(zhǎng)度和序列及應(yīng)用的引物數(shù)目、擴(kuò)增反應(yīng)條件等實(shí)驗(yàn)技術(shù)方面未標(biāo)準(zhǔn)化，影響了不同條件下結(jié)果的可比性；每個(gè)標(biāo)記含有的信息量小；有假陽(yáng)性或假陰性結(jié)果；顯性標(biāo)記，無(wú)法區(qū)分從一個(gè)位點(diǎn)擴(kuò)增的DNA片段是純合的還是雜合的，無(wú)法進(jìn)行等位基因分析。用在種以上類(lèi)群間的比較時(shí)無(wú)法得到可靠的遺傳距離。RAPD的缺點(diǎn)RAPD圖譜中某些弱帶重復(fù)性較差，而且目前該36二）擴(kuò)增片段長(zhǎng)度多態(tài)性（Amplifiedrestrictionfragmentpolymorphism,AFLP）AFLP是1993年由荷蘭科學(xué)家Zabeau等人將PCR與RFLP結(jié)合起來(lái)，創(chuàng)造了AFLP分析技術(shù)。AFLP標(biāo)記是選擇性擴(kuò)增基因組DNA酶切片段所產(chǎn)生的擴(kuò)增產(chǎn)物的多態(tài)性，其實(shí)質(zhì)也是顯示限制性?xún)?nèi)切酶酶切片段的長(zhǎng)度多態(tài)性，只不過(guò)這種多態(tài)性是以擴(kuò)增片段的長(zhǎng)度不同被檢測(cè)出來(lái)。

二）擴(kuò)增片段長(zhǎng)度多態(tài)性（Amplifiedrestrict37基本原理首先用限制性?xún)?nèi)切酶酶解基因組DNA，形成許多大小不等的隨機(jī)限制性片段；接著在這些片段的兩端連接上特定的寡聚核苷酸接頭（Oligonuleotideadapter）；然后根據(jù)接頭序列設(shè)計(jì)引物，由于限制性片段太多，全部擴(kuò)增則產(chǎn)物難以在膠上分開(kāi)，為此在引物的3’端加入1-3個(gè)選擇性堿基，這樣只有那些能與選擇性堿基配對(duì)的片段才能與引物結(jié)合，成為模板被擴(kuò)增，從而達(dá)到對(duì)限制性片段進(jìn)行選擇擴(kuò)增的目的；最后通過(guò)聚丙烯酰胺凝膠電泳，將這些特異性的擴(kuò)增產(chǎn)物分離開(kāi)來(lái)。

基本原理首先用限制性?xún)?nèi)切酶酶解基因組DNA，形成許多大小不等38分子標(biāo)記技術(shù)課件39分子標(biāo)記技術(shù)課件40技術(shù)路線（1）首先要制備高分子量(HMW)基因組DNA，選擇6個(gè)堿基識(shí)別位點(diǎn)的限制性?xún)?nèi)切酶(通常是EcoRI或PstI或SacI)。（2）酶切后的限制性片段在T4連接酶的作用下與特定的接頭相連接，形成帶有接頭的特異性片段。（3）DNA片段的預(yù)擴(kuò)增。（4）在Taq聚合酶的作用下，完成AFLP的選擇性擴(kuò)增。（5）PCR產(chǎn)物變性后在含尿素的聚丙烯酰胺變性膠上電泳。（6）多態(tài)性比較分析，特異片段回收克隆分析。

技術(shù)路線（1）首先要制備高分子量(HMW)基因組DNA，選擇41AFLP結(jié)合了RFLP與PCR技術(shù)的特點(diǎn)，兼具RFLP和RAPD兩種方法的特長(zhǎng)，既繼承了RFLP的穩(wěn)定性，又具有了PCR反應(yīng)快速、靈敏的特點(diǎn)，同時(shí)克服了RFLP和RAPD的缺點(diǎn)。采用少數(shù)幾對(duì)引物的多種組合即可獲得大量遺傳信息，避免了RAPD分子標(biāo)記重復(fù)性差、假陽(yáng)性反應(yīng)過(guò)高等不利因素的影響，同時(shí)又無(wú)需任何目的基因組DNA的背景資料即可完成模板DNA多態(tài)性檢測(cè)，擺脫了RFLP的轉(zhuǎn)膜、克隆、探針制備、分子雜交等一系列繁重且又有一定難度的工作。AFLP結(jié)合了RFLP與PCR技術(shù)的特點(diǎn)，兼具RFLP和RA42用AFLP分析的多態(tài)性是典型的孟德?tīng)柺竭z傳和選擇中性。它可以用于遺傳分析的各個(gè)方面：如用于擬南芥屬連鎖圖的構(gòu)建用于馬鈴薯的栽培種的鑒定等。AFLP也適于鑒定遺傳多樣性的物種親緣關(guān)系的研究。用AFLP分析的多態(tài)性是典型的孟德?tīng)柺竭z傳和選擇中性。它可以43（1）由于AFLP分析可以采用的限制性?xún)?nèi)切酶及選擇性堿基種類(lèi)、數(shù)目很多，所以該技術(shù)所產(chǎn)生的標(biāo)記數(shù)目是無(wú)限多的；（2）典型的AFLP分析，每次反應(yīng)產(chǎn)物的譜帶在50-100條之間，所以一次分析可以同時(shí)檢測(cè)到多個(gè)座位，且多態(tài)性極高；（3）表現(xiàn)共顯性，呈典型孟德?tīng)柺竭z傳；（4）分辯率高，結(jié)果可靠；（5）目前該技術(shù)受專(zhuān)利保護(hù)，用于分析的試劑盒昂貴，實(shí)驗(yàn)條件要求較高。AFLP特點(diǎn)（1）由于AFLP分析可以采用的限制性?xún)?nèi)切酶及選擇性堿44專(zhuān)利技術(shù)，試劑盒價(jià)格貴需要同位素或非同位素標(biāo)記引物，須具特殊防護(hù)措施、配套儀器設(shè)備基因組的不完全酶切會(huì)影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果，所以實(shí)驗(yàn)對(duì)DNA純度和內(nèi)切酶的質(zhì)量要求較高。缺點(diǎn)缺點(diǎn)45應(yīng)用

AFLP具有可靠性好，重復(fù)性強(qiáng)，可信度高等優(yōu)點(diǎn)，近年來(lái)廣泛應(yīng)用于遺傳育種研究，在動(dòng)物遺傳育種、動(dòng)物基因組研究中有著廣泛的應(yīng)用前景。構(gòu)建遺傳連鎖圖譜利用AFLP快速鑒別與目的基因緊密連鎖的分子標(biāo)記AFLP輔助的輪回選擇育種利用AFLP技術(shù)研究基因表達(dá)與調(diào)控分類(lèi)和進(jìn)化研究甲基化研究應(yīng)用AFLP具有可靠性好，重復(fù)性強(qiáng)，可46在AFLP技術(shù)的基礎(chǔ)上又發(fā)展了一種新的分子標(biāo)記———TE2AFLP(三內(nèi)切酶擴(kuò)增的限制片段長(zhǎng)度多態(tài)性,threeendonucleaseamplifiedfragmentlengthpolymorphism).該技術(shù)是由荷蘭科學(xué)家VanderWurff等在2000年末發(fā)表的.TE2AFLP也是首先擴(kuò)增限制性?xún)?nèi)切酶片段,然后在高分辨率凝膠(通常為序列分析膠)上電泳分離這些擴(kuò)增的片段,再根據(jù)這些片段的長(zhǎng)度來(lái)檢測(cè)DNA多態(tài)性。與AFLP不同的是要用2種低頻率切點(diǎn)內(nèi)切酶和1種高頻率切點(diǎn)內(nèi)切酶混合酶切基因組DNA.TE2AFLP保留和發(fā)展了AFLP的優(yōu)點(diǎn),克服了AFLP常見(jiàn)的缺點(diǎn),具有可靠、快速和方便的特點(diǎn).因此,它將廣泛地被應(yīng)用。在AFLP技術(shù)的基礎(chǔ)上又發(fā)展了一種新的分子標(biāo)記———TE2A47三）簡(jiǎn)單序列重復(fù)標(biāo)記

（simplesequencerepeat，SSR）又稱(chēng)微衛(wèi)星DNA(Micro-satelliteDNA)標(biāo)記；屬高度重復(fù)序列，重復(fù)單元2~6bp，如(CA)n、(AT)、(GGC)n等重復(fù)，重復(fù)區(qū)大多幾十~幾百bp，分散在基因組中，大多不存在于編碼序列內(nèi)，具有較高的多態(tài)性。呈現(xiàn)孟德?tīng)柺竭z傳。目前微衛(wèi)星DNA已經(jīng)發(fā)現(xiàn)了２萬(wàn)余個(gè)位點(diǎn)。TTCAGCTAGCTCAGCAGCAGCAGCAGCAGAGCTTGCAAGTCGATCGAGTCGTCGTCGTCGTCGTCTCGAACG三）簡(jiǎn)單序列重復(fù)標(biāo)記

（simplesequencere48

由Moore等于1991年創(chuàng)立。SSR即微衛(wèi)星DNA，廣泛分布于基因組的不同位置，如（CA）n、（AT）n、（GGC）n等重復(fù)。不同遺傳材料重復(fù)次數(shù)的可變性，導(dǎo)致了SSR長(zhǎng)度的高度變異性，這一變異性正是SSR標(biāo)記產(chǎn)生的基礎(chǔ)。盡管微衛(wèi)星DNA分布于整個(gè)基因組的不同位置，但其兩端序列多是保守的單拷貝序列，因此可以根據(jù)這兩端的序列設(shè)計(jì)一對(duì)特異引物，通過(guò)PCR技術(shù)將其間的核心微衛(wèi)星DNA序列擴(kuò)增出來(lái)，利用電泳分析技術(shù)就可獲得其長(zhǎng)度多態(tài)性，即SSR標(biāo)記。

原理由Moore等于1991年創(chuàng)立。SSR即49

微衛(wèi)星DNA一般位于內(nèi)含子中，因此它在進(jìn)化過(guò)程中受到選擇壓力較小，與其他分子標(biāo)記相比，微衛(wèi)星在多態(tài)性，群體平均雜合度，以及群體間遺傳距離等方面，微衛(wèi)星位點(diǎn)值均高于蛋白質(zhì)位點(diǎn)，用微衛(wèi)星作為遺傳標(biāo)記更適合于這些方面的分析，同樣也更適于檢測(cè)個(gè)體間的差異，微衛(wèi)星DNA為共顯性遺傳，利用PCR及電泳檢測(cè)相對(duì)容易，也更便于實(shí)現(xiàn)自動(dòng)化，可通過(guò)計(jì)算雜合度，較好的進(jìn)行個(gè)體鑒定。微衛(wèi)星DNA一般位于內(nèi)含子中，因此它在進(jìn)化50

建立DNA文庫(kù)，篩選鑒定微衛(wèi)星DNA克隆，然后測(cè)定這些克隆的側(cè)翼序列，設(shè)計(jì)特異性引物來(lái)擴(kuò)增SSR序列。后經(jīng)聚丙烯酰胺凝膠電泳、染色，通過(guò)比較譜帶的相對(duì)遷移距離，便可知不同個(gè)體在某個(gè)SSR座位上的多態(tài)性。技術(shù)路線建立DNA文庫(kù)，篩選鑒定微衛(wèi)星DNA克隆，然后51

（1）數(shù)量幾乎無(wú)限，檢測(cè)出多態(tài)性的頻率極高；（2）SSR技術(shù)一般檢測(cè)到的是一個(gè)單一的多等位基因位點(diǎn)；（3）SSR標(biāo)記為共顯性標(biāo)記，可鑒別出雜合子和純合子；（4）結(jié)果重復(fù)性高，穩(wěn)定可靠。為了提高分辨力，通常使用可檢測(cè)出單拷貝差異的聚丙烯酰胺凝膠電泳；（5）兼具PCR反應(yīng)的優(yōu)點(diǎn)，即所需DNA樣品量少，對(duì)DNA質(zhì)量要求亦不苛刻。優(yōu)點(diǎn)必須事先知道微衛(wèi)星兩翼序列信息才能設(shè)計(jì)引物，對(duì)于許多物種需要構(gòu)建文庫(kù)。這將給微衛(wèi)星標(biāo)記的開(kāi)發(fā)帶來(lái)一定的困難。缺點(diǎn)（1）數(shù)量幾乎無(wú)限，檢測(cè)出多態(tài)性的頻率極高；優(yōu)點(diǎn)52應(yīng)用SSR標(biāo)記在數(shù)據(jù)上比前述分子標(biāo)記能顯示出更多的多態(tài)性，已在遺傳疾病的診斷、構(gòu)建遺傳圖譜、種質(zhì)資源鑒定、基因定位及分子標(biāo)記輔助育種、植物生態(tài)學(xué)和系統(tǒng)與進(jìn)化研究等領(lǐng)域得到了廣泛的應(yīng)用。微衛(wèi)星DNAPCR擴(kuò)增結(jié)果（示例）500bp400bp300bp240bp

該結(jié)果顯示在所檢查的人群中，該位點(diǎn)多態(tài)性有四種。應(yīng)用SSR標(biāo)記在數(shù)據(jù)上比前述分子標(biāo)記能顯示出更多的多態(tài)性，已53四）微衛(wèi)星間隔（Intersimplesequencerepeat，ISSR）

Zietkiewiczetal.(1994)對(duì)SSR技術(shù)進(jìn)行了發(fā)展，他們用加錨微衛(wèi)星寡核苷酸作引物，對(duì)基因組節(jié)段而不是重復(fù)序列本身進(jìn)行擴(kuò)增。在SSR的5端或3端加上2－4個(gè)隨機(jī)選擇的核苷酸，這可引起特點(diǎn)位點(diǎn)退火。這樣就能導(dǎo)致位于反向排列的間隔不太大的重復(fù)序列間的基因組節(jié)段進(jìn)行PCR擴(kuò)增。這類(lèi)標(biāo)記又被稱(chēng)為ISSR(inter-simplesequencerepeat)。四）微衛(wèi)星間隔（Intersimplesequence54基本原理用錨定的微衛(wèi)星DNA為引物，即在SSR序列的3'端或5'端加上2-4個(gè)隨機(jī)核昔酸，在PCR反應(yīng)中，錨定引物可引起特定位點(diǎn)退火，導(dǎo)致與錨定引物互補(bǔ)的間隔不太大的重復(fù)序列間DNA片段進(jìn)行PCR擴(kuò)增。所擴(kuò)增的interSSR區(qū)域的多個(gè)條帶通過(guò)聚丙烯酞胺凝膠電泳得以分辨，擴(kuò)增譜帶多為顯性表現(xiàn)。

基本原理用錨定的微衛(wèi)星DNA為引物，即在SSR序列的3'端或55ISSR引物的開(kāi)發(fā)不像SSR引物那樣需測(cè)序獲得SSR兩側(cè)的單拷貝序列，開(kāi)發(fā)費(fèi)用降低。與SSR標(biāo)記相比，ISSR引物可以在不同的物種間通用，不像SSR標(biāo)記一樣具有較強(qiáng)的種特異性;與RAPD和RFLP相比，ISSR揭示的多態(tài)性較高，可獲得幾倍于RAPD的信息量，精確度幾乎可與RFLP相媲美，檢測(cè)非常方便，因而是一種非常有發(fā)展前途的分子標(biāo)記。ISSR引物的開(kāi)發(fā)不像SSR引物那樣需測(cè)序獲得SSR兩側(cè)的單56目前，ISSR標(biāo)記已廣泛應(yīng)用于植物品種鑒定、遺傳作圖、基因定位、遺傳多樣性、進(jìn)化及分子生態(tài)學(xué)研究中。但是由于不知道目的基因組DNA的背景資料，有一些ISSR引物可能在特定基因組DNA中沒(méi)有配對(duì)區(qū)域而無(wú)擴(kuò)增產(chǎn)物。而且ISSR也是一種顯性標(biāo)記，模板濃度需要較一致，最適反應(yīng)條件需要一定時(shí)間摸索。目前，ISSR標(biāo)記已廣泛應(yīng)用于植物品種鑒定、遺傳作圖、基因定57ISSR與RAPD技術(shù)很相似，引物和鎂離子濃度以及退火溫度明顯地影響擴(kuò)增帶的式樣，Taq聚合酶的活性也會(huì)影響PCR擴(kuò)增結(jié)果。一般來(lái)講所研究的基因組DNA越復(fù)雜，重復(fù)序列的密度越高，對(duì)引物的專(zhuān)一性要求就越高，運(yùn)行PCR的條件也越嚴(yán)格。ISSR引物對(duì)Mg2+濃度的敏感度大于RAPD，由于引物與模板的雙鏈雜交體的解鏈與退火溫度受二價(jià)陽(yáng)離子的影響；游離的Mg2+用來(lái)增強(qiáng)DNA聚合酶的活性，它也可與dNTP中磷酸基結(jié)合，而Mg2+和dNTP在PCR擴(kuò)增過(guò)程中相互作用，只有Mg2+和dNTP的濃度在合適范圍內(nèi)，才能得到好的PCR擴(kuò)增結(jié)果。ISSR與RAPD技術(shù)很相似，引物和鎂離子濃度以及退火溫度明58在PCR擴(kuò)增反應(yīng)中，退火溫度的影響最大。一般在運(yùn)行ISSR－PCR時(shí)，采用48－52℃退火溫度都能得到好的擴(kuò)增帶。Virketal的研究中退火溫度控制在39－59℃之間也能擴(kuò)增出好的帶譜。但不同的引物在不同的物種中所需的退火溫度是不同的，對(duì)ISSR引物來(lái)說(shuō)，可適當(dāng)提高其退火溫度得到穩(wěn)定清晰的帶譜。在PCR擴(kuò)增反應(yīng)中，退火溫度的影響最大。一般在運(yùn)行ISSR－59

a.引物

PCR結(jié)果的特異性取決于引物的特異性，擴(kuò)增產(chǎn)物的大小也是由特異引物限定的。因此，PCR所用引物質(zhì)量要高，且需純化。PCR反應(yīng)中引物的量也影響PCR擴(kuò)增效果，當(dāng)PCR引物量太低，則產(chǎn)物量降低，會(huì)出現(xiàn)假陰性。引物濃度過(guò)高會(huì)促進(jìn)引物的錯(cuò)誤引導(dǎo)非特異產(chǎn)物合成，還會(huì)增加引物二聚體的形成。

PCR反應(yīng)條件PCR反應(yīng)五要素：參加PCR反應(yīng)的物質(zhì)主要有五種即引物、酶、dNTP、模板和Mg2+

a.引物PCR反應(yīng)條件PCR反應(yīng)五要素：60

b.酶該酶的最適溫度很高（79℃），使引物在高溫下進(jìn)行退火和延伸，這樣便增加了反應(yīng)的總強(qiáng)度并減少了與錯(cuò)配引物的延伸。在PCR反應(yīng)中，每100μl反應(yīng)液中含1-2.5uTaqDNA聚合酶為佳，酶的濃度太低會(huì)使擴(kuò)增產(chǎn)物產(chǎn)量降低，如果酶的濃度太高則會(huì)出現(xiàn)非特異性擴(kuò)增。TaqDNA聚合酶保存不當(dāng)而失活是PCR實(shí)驗(yàn)失敗的常見(jiàn)原因。b.酶61

c.dNTP四種脫氧核苷三磷酸（dATP、dCTP、dGTP、dTTP）是DNA合成的基本原料，PCR反應(yīng)中dNTP含量太低，PCR擴(kuò)增產(chǎn)量太少、易出現(xiàn)假陰性。過(guò)高的dNTP濃度會(huì)導(dǎo)致聚合將其錯(cuò)誤摻入，因此應(yīng)當(dāng)避免。c.dNTP62

d.模板PCR可以以DNA或RNA為模板進(jìn)行核酸的體外擴(kuò)增。不過(guò)RNA的擴(kuò)增首先逆轉(zhuǎn)錄成cDNA后才能進(jìn)行PCR循環(huán)。不同來(lái)源的核酸標(biāo)本必須經(jīng)處理后才能用于PCR的擴(kuò)增，處理不當(dāng)或處理過(guò)程中DNA掉失都會(huì)導(dǎo)致PCR擴(kuò)增失敗。采集標(biāo)本方法不當(dāng)，未能獲得所要檢測(cè)的靶DNA都會(huì)導(dǎo)致出現(xiàn)假陰性。但是如果待擴(kuò)增標(biāo)本中模板DNA濃度太高也會(huì)導(dǎo)致擴(kuò)增失敗。d.模板63

e.Mg2+Mg2+濃度直接影響著酶的活性與忠實(shí)性，這是TaqDNA聚合酶活性所必需的。另外它還影響著引物的退火，模板與PCR產(chǎn)物的解鏈溫度，產(chǎn)物的特異性，引物二聚體的形成等。Mg2+濃度過(guò)低時(shí)，酶活力顯著降低；過(guò)高時(shí)，通常會(huì)導(dǎo)致非特異性擴(kuò)增產(chǎn)物的累積。e.Mg2+641.分子遺傳圖譜的構(gòu)建

目前幾乎所有重要農(nóng)作物，如擬南芥、番茄、玉米、水稻、甜菜、小麥、大豆、馬鈴薯、棉花、油菜等的RFLP圖譜均已構(gòu)成，隨著多種標(biāo)記的不斷添加與定位，分子遺傳圖譜正日漸趨于飽和。遺傳圖譜對(duì)于基因定位至關(guān)重要，圖譜上包括的標(biāo)記數(shù)越多，分布越均勻，則基因定位就越精細(xì)。高密度分子遺傳圖譜的繪制使一些植物的遺傳學(xué)研究取得了重大進(jìn)展，并對(duì)分子標(biāo)記輔助育種選擇技術(shù)和基因圖位克隆技術(shù)的發(fā)展產(chǎn)生了巨大的推動(dòng)作用。

第一、二類(lèi)分子標(biāo)記的應(yīng)用1.分子遺傳圖譜的構(gòu)建第一、二類(lèi)分子標(biāo)記的應(yīng)用652.遺傳多樣性與種質(zhì)鑒定分子標(biāo)記廣泛存在于基因組DNA的各個(gè)區(qū)域，數(shù)量巨大，通過(guò)對(duì)隨機(jī)分布于整個(gè)基因組的分子標(biāo)記的多態(tài)性進(jìn)行比較，就能夠全面評(píng)估研究對(duì)象的多樣性，并揭示其遺傳本質(zhì)。利用遺傳多樣性的結(jié)果可以對(duì)種質(zhì)進(jìn)行聚類(lèi)分析，進(jìn)而了解其系統(tǒng)發(fā)育與親緣關(guān)系。而以分子標(biāo)記為基礎(chǔ)的比較基因組研究則有利于探明近緣物種間的遺傳同源性以及物種起源等生命科學(xué)領(lǐng)域中的重要問(wèn)題。2.遺傳多樣性與種質(zhì)鑒定66微衛(wèi)星標(biāo)記等具有很高的多態(tài)性，可以用于鑒別同一物種的不同基因型，如Olufowote等選擇4個(gè)SSR標(biāo)記即可有效地評(píng)估栽培稻內(nèi)不同品種間的異質(zhì)性；Guifford等用3個(gè)SSR標(biāo)記就能區(qū)分21個(gè)蘋(píng)果品種。分子標(biāo)記的這一特點(diǎn)還可用于鑒別品種的混雜情況和真假雜種的判斷等。微衛(wèi)星標(biāo)記等具有很高的多態(tài)性，可以用于鑒別同一物種的不同基因673.重要農(nóng)藝性狀相關(guān)基因的定位

基因定位就是確定基因在染色體上的位置及與之相連鎖的分子標(biāo)記，高密度分子遺傳圖譜的構(gòu)建使基因定位工作變得相對(duì)容易。

目前已完成了重要作物大量控制農(nóng)藝性狀表現(xiàn)如抗病性、抗蟲(chóng)性、育性等的主基因的定位工作，為開(kāi)展這些基因的分子育種奠定了基礎(chǔ)。3.重要農(nóng)藝性狀相關(guān)基因的定位

基因68尤為重要的是分子標(biāo)記技術(shù)為呈數(shù)量遺傳、易受環(huán)境條件影響的重要農(nóng)藝性狀的QTL定位提供了有效手段，目前涉及到QTL圖譜繪制及大量復(fù)雜的數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)、分析、運(yùn)算工作已有多個(gè)配套的計(jì)算機(jī)軟件被開(kāi)發(fā)出來(lái)。QTL的定位使得控制數(shù)量性狀的多基因被轉(zhuǎn)變成一個(gè)個(gè)獨(dú)立的“主基因”，便于進(jìn)行遺傳操作，這無(wú)疑有利于對(duì)產(chǎn)量、生育期等性狀的定向改良。尤為重要的是分子標(biāo)記技術(shù)為呈數(shù)量遺傳、易受環(huán)境條件影響的重要694.分子標(biāo)記輔助選擇

選擇是育種的重要環(huán)節(jié)，傳統(tǒng)育種對(duì)目標(biāo)性狀多采用直接選擇的方法，但作物的許多農(nóng)藝性狀不容易觀測(cè)或易受環(huán)境影響、表現(xiàn)不穩(wěn)定，直接選擇比較困難。而在完成基因的分子標(biāo)記定位后，就可以通過(guò)連鎖標(biāo)記對(duì)這些性狀進(jìn)行間接選擇，從而提高它們的選擇效率。

4.分子標(biāo)記輔助選擇

選擇是育種的重要70與傳統(tǒng)選擇相比，分子標(biāo)記輔助選擇有許多顯著的優(yōu)點(diǎn)，主要體現(xiàn)在：（1）可以清除同一座位不同等位基因間或不同座位間互作的干擾，消除環(huán)境的影響；（2）在幼苗階段就可以對(duì)在成熟期表達(dá)的性狀進(jìn)行鑒定，如果實(shí)性狀、雄性不育等；（3）可有效地對(duì)表型鑒定十分困難的性狀進(jìn)行鑒定，如抗病性、根部性狀等；（4）共顯性標(biāo)記可區(qū)分純合體和雜合體，不需下代再鑒定；（5）可同時(shí)對(duì)多個(gè)性狀進(jìn)行選擇，開(kāi)展聚合育種，快速完成對(duì)多個(gè)目標(biāo)性狀的同時(shí)改良；（6）加速回交育種進(jìn)程，克服不良性狀連鎖，有利于導(dǎo)入遠(yuǎn)緣優(yōu)良基因。

與傳統(tǒng)選擇相比，分子標(biāo)記輔助選擇有許多顯著的優(yōu)點(diǎn)，主要體現(xiàn)在71將分子標(biāo)記輔助選擇應(yīng)用于作物改良的實(shí)踐中，已取得一些實(shí)質(zhì)性進(jìn)展。如國(guó)際水稻所利用與Xa-4，xa-5，xa-13和Xa-21四個(gè)抗白葉枯病基因連鎖的STS標(biāo)記輔助選擇，成功地將這四個(gè)基因以不同組合方式聚合在一起，育成了高抗、多抗白葉枯病水稻新品種。將分子標(biāo)記輔助選擇應(yīng)用于作物改良的實(shí)踐中，已取得一些實(shí)質(zhì)性進(jìn)725.重要農(nóng)藝性狀的圖位克隆

圖位克隆（Map-basedcloning）是近幾年隨著植物分子標(biāo)記遺傳圖譜的相繼建立和基因分子定位而發(fā)展起來(lái)的一種新的基因克隆技術(shù)。利用分子標(biāo)記輔助的圖位克隆無(wú)須事先知道基因的DNA序列，也不用了解基因的表達(dá)產(chǎn)物是什么就可以直接克隆基因。5.重要農(nóng)藝性狀的圖位克隆

圖位克隆（73一）單核苷酸多態(tài)性

(singlenucleotidepolymorphism，SNP)1.定義單核苷酸多態(tài)性(SNP)主要是指在基因組水平上由單個(gè)核苷酸的變異所引起的DNA序列多態(tài)性。不同個(gè)體間，基因組DNA某部位的單核苷酸的變異。1996年，Lander報(bào)道了用單核苷酸多態(tài)性標(biāo)記（singlenucleotidpolymorphismSNP）。是第三代遺傳標(biāo)記。第三類(lèi)分子標(biāo)記技術(shù)

以DNA序列分析為核心一）單核苷酸多態(tài)性

(singlenucleotidep74

SNP在人類(lèi)基因組中廣泛存在，平均每500～1000個(gè)堿基對(duì)中就有1個(gè)，估計(jì)其總數(shù)可達(dá)1700萬(wàn)個(gè)甚至更多。在基因組DNA中，任何堿基均有可能發(fā)生變異，因此SNP既有可能在基因序列內(nèi)，也有可能在基因以外的非編碼序列上。總的來(lái)說(shuō)，位于編碼區(qū)內(nèi)的SNP(codingsNP,cSNP)比較少，因?yàn)樵谕怙@子內(nèi)，其變異率僅及周?chē)蛄械?/5。但它在遺傳性疾病研究中卻具有重要意義，因此cSNP的研究更受關(guān)注。SNP在人類(lèi)基因組中廣泛存在，平均每75SNP與RFLP和STR標(biāo)記的主要不同之處在于，它不再以DNA片段的長(zhǎng)度變化作為檢測(cè)手段，而直接以序列變異作為標(biāo)記。SNP與RFLP和STR標(biāo)記的主要不同之處在76分子標(biāo)記技術(shù)課件77SNP的優(yōu)點(diǎn)(1)SNP在人群中是二等位基因性的，在任何人群中其等位基因頻率都可估計(jì)出來(lái)。(2)它在基因組中的分布較微衛(wèi)星標(biāo)記廣泛得多。(3)與串聯(lián)重復(fù)的微衛(wèi)星位點(diǎn)相比，SNP是高度穩(wěn)定的，尤其是處于編碼區(qū)的SNP(cSNP),而前者的高突變率容易引起對(duì)人群的遺傳分析出現(xiàn)困難。(4)部分位于基因內(nèi)部的SNP可能會(huì)直接影響產(chǎn)物蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)或基因表達(dá)水平，因此，它們本身可能就是疾病遺傳機(jī)制的候選改變位點(diǎn)。(5)易于進(jìn)行自動(dòng)化分析，縮短了研究時(shí)間。SNP的優(yōu)點(diǎn)(1)SNP在人群中是二等位基因性的，在任何人78日本研究人員最近經(jīng)過(guò)研究發(fā)現(xiàn)，與糖尿病有關(guān)的基因并不是千篇一律，它們之間存在著個(gè)人差別，即“單核苷酸多態(tài)性”（SNP）。

日本研究人員最近經(jīng)過(guò)研究發(fā)現(xiàn)，與糖尿病有79

EST是cDNA的部分序列，平均長(zhǎng)度為300~500bp，由大規(guī)模cDNA克隆一次測(cè)序得到，因此稱(chēng)作表達(dá)序列標(biāo)簽。通常是從已有的cDNA文庫(kù)中隨機(jī)取出幾百到幾千個(gè)克隆一次測(cè)

序產(chǎn)生。一般使用載體多克隆位點(diǎn)互補(bǔ)序列作為通用引物。一個(gè)EST代表生物體某種組織某一時(shí)期的一個(gè)表達(dá)基因。EST目前主要被用于尋找新基因和了解基因表達(dá)概況。二）表達(dá)序列標(biāo)簽（expressedsequencetag，EST）二）表達(dá)序列標(biāo)簽80

一般步驟如下：建立組織或細(xì)胞的cDNA文庫(kù)→從文庫(kù)中隨機(jī)取出足夠量的cDNA克隆進(jìn)行自動(dòng)測(cè)序→生物信息學(xué)分析（即將所得的EST數(shù)據(jù)與dbEST等數(shù)據(jù)庫(kù)的數(shù)據(jù)比較，確定哪些代表已知基因、哪些代表未知基因）

→進(jìn)一步分析未知基因或歸類(lèi)分析全部EST以獲得組織或細(xì)胞的基因表達(dá)概況。一般步驟如下：81

SRAP是一種新型的基于PCR的標(biāo)記系統(tǒng)，由美國(guó)加州大學(xué)蔬菜作物系Li與Quiros博士于2001年提出，又叫基于序列擴(kuò)增多態(tài)性（sequence-basedamplifiedpolymorphism，SBAP）。三）相關(guān)序列擴(kuò)增多態(tài)性(sequence-relatedamplifiedpolymorphism,SRAP)SRAP是一種新型的基于PCR的標(biāo)記82

引物設(shè)計(jì)是SRAP分析的核心。SRAP標(biāo)記分析共有兩套引物。在一組正向SRAP引物中使用“CCGG”序列，其目的是使之特異結(jié)合可譯框（ORFs）區(qū)域中的外顯子。運(yùn)用CCGG序列就可特異擴(kuò)增出包含這些組分的序列。

由于外顯子序列在不同個(gè)體中通常是保守的，這種低水平多態(tài)性限制了將它們做為標(biāo)記的來(lái)源。由于內(nèi)含子、啟動(dòng)子和間隔序列在不同物種甚至不同個(gè)體間變異很大，富含AT的區(qū)域序列通常見(jiàn)于啟動(dòng)子和內(nèi)含子中，SRAP中使用的反向引物的3′端含有核心AATT，以特異結(jié)合富含AT區(qū)，這就使得有可能擴(kuò)增出基于內(nèi)含子與外顯子的SRAP多態(tài)性標(biāo)記。SRAP標(biāo)記引物設(shè)計(jì)原理

引物設(shè)計(jì)是SRAP分析的核心。SRAP標(biāo)記分83

引物大小和引物組合是成功進(jìn)行SRAP分析的關(guān)鍵。SRAP-PCR反應(yīng)體系中使用兩個(gè)引物：17堿基正向引物（F-primer）和18堿基反向引物(R-primer)；正向引物含有一段14堿基的核心序列（coresequence）：5′端前10個(gè)堿基為“填充”序列（fillersequence），無(wú)任何特異組成，接著為CCGG序列；隨后為3′端的3個(gè)選擇性堿基，選擇性堿基的變化與相同核心序列組合成一套正向引物。反向引物的組成與正向引物類(lèi)似，但“填充”序列后連接的為AATT；AATT序列后為3個(gè)選擇性可變堿基，位于引物3′端。構(gòu)建正向與反向引物的總體要求是它們不形成發(fā)夾結(jié)構(gòu)及其他二級(jí)結(jié)構(gòu)，且CG含量為40%－50%，且兩者“填充”序列在組成上必須不同，長(zhǎng)度為10或11個(gè)堿基。

引物設(shè)計(jì)

引物大小和引物組合是成功進(jìn)行SRAP分84

由于在設(shè)計(jì)引物時(shí)正反引物分別是針對(duì)序列相對(duì)保守的編碼區(qū)與變異大的內(nèi)含子、啟動(dòng)子和間隔序列，因此，多數(shù)SRAP標(biāo)記在基因組中分布是均勻的。SRAP標(biāo)記測(cè)序顯示多數(shù)標(biāo)記為外顯子區(qū)域。SRAP多態(tài)性產(chǎn)生于兩個(gè)方面：由于小的插入與缺失導(dǎo)致片段大小改變，而產(chǎn)生共顯性標(biāo)記；核苷酸改變影響引物的結(jié)合位點(diǎn)，導(dǎo)致顯性標(biāo)記產(chǎn)生。

SRAP標(biāo)記特征

由于在設(shè)計(jì)引物時(shí)正反引物分別是針對(duì)序列相對(duì)85

TRAP也是一種新型的基于PCR標(biāo)記，由美國(guó)農(nóng)部北方作物科學(xué)實(shí)驗(yàn)室Hu與Vick于2003年提出。

四）靶位區(qū)域擴(kuò)增多態(tài)性(targetregionamplifiedpolymorphism，TRAP)

與SRAP、RAPD和AFLP等標(biāo)記技術(shù)無(wú)須任何序列信息即可直接PCR擴(kuò)增不同，TRAP技術(shù)是基于已知的cDNA或EST序列信息。目前已獲得許多物種基因組序列的豐富信息，包括人類(lèi)、擬南芥，以及重要作物水稻和多種微生物的基因組序列草圖繪制成功，有大量的EST序列可供使用，從而使得可以利用生物信息學(xué)工具和EST數(shù)據(jù)庫(kù)信息產(chǎn)生出許多靶基因序列的TRAP多態(tài)性標(biāo)記，而且極易將性狀與標(biāo)記相關(guān)聯(lián)。

TRAP也是一種新型的基于PCR標(biāo)記，86

TRAP技術(shù)是從SRAP技術(shù)改進(jìn)而來(lái)的。SRAP使用兩個(gè)任意引物；而TRAP是使用長(zhǎng)度為16~20核苷的固定引物（fixedprimer）與任意引物(arbitraryprime)，固定引物以公用數(shù)據(jù)庫(kù)中的靶EST序列設(shè)計(jì)而來(lái)；任意引物與SRAP所用的一樣，為一段以富含AT或GC為核心、可與內(nèi)含子或外顯子區(qū)配對(duì)的隨機(jī)序列。TRAP技術(shù)是從SRAP技術(shù)改進(jìn)而來(lái)87從EST數(shù)據(jù)庫(kù)中鑒別所需序列，再采用有關(guān)引物設(shè)計(jì)軟件（如Primer3等）設(shè)定核苷酸序列合理長(zhǎng)度（18堿基）與最適、最大和最小Tm值（53、55、50℃），最后選定最適的引物;任意引物設(shè)計(jì)完全同SRAP技術(shù)。TRAP-PCR反應(yīng)條件與SRAP-PCR完全一致。每次TRAP-PCR反應(yīng)在6.5%聚丙烯酰胺測(cè)序膠可產(chǎn)生50－900bp的片段30-50個(gè)。固定引物的設(shè)計(jì)步驟從EST數(shù)據(jù)庫(kù)中鑒別所需序列，再采用88

SRAP分子標(biāo)記系統(tǒng)最早是在蕓薹屬作物開(kāi)發(fā)出來(lái)。目前已在其他作物如馬鈴薯、水稻、生菜、油菜、大蒜、蘋(píng)果、櫻桃、柑橘與芹菜中也成功擴(kuò)增。TRAP技術(shù)是在向日葵中開(kāi)發(fā)的，目前已成功應(yīng)用于其他作物如水稻、菜豆、大麥、小麥、甜菜。主要用于種質(zhì)資源的鑒定評(píng)價(jià)、遺傳圖譜的構(gòu)建、重要性狀基因標(biāo)記、gDNA與cDNA指紋分析乃至圖位克隆等方面。第三類(lèi)分子標(biāo)記的應(yīng)用第三類(lèi)分子標(biāo)記的應(yīng)用89

▲種質(zhì)資源的鑒定評(píng)價(jià)

▲遺傳圖譜構(gòu)建▲繪制基因組轉(zhuǎn)錄圖譜▲重要性狀基因標(biāo)記▲SRAP標(biāo)記測(cè)序與基因克隆▲種質(zhì)資源的鑒定評(píng)價(jià)

▲遺傳圖譜構(gòu)建90一、分子標(biāo)記的概述廣義的分子標(biāo)記(molecularmarker)是指可遺傳的并可檢測(cè)的DNA序列或蛋白質(zhì)。蛋白質(zhì)標(biāo)記包括種子貯藏蛋白和同工酶（指由一個(gè)以上基因位點(diǎn)編碼的酶的不同分子形式）及等位酶（指由同一基因位點(diǎn)的不同等位基因編碼的酶的不同分子形式）。狹義的分子標(biāo)記概念只是指DNA標(biāo)記，而這個(gè)界定現(xiàn)在被廣泛采納：能反映生物個(gè)體或種群間基因組中某種差異特征的DNA片段，它直接反映基因組DNA間的差異。第一講分子標(biāo)記技術(shù)一、分子標(biāo)記的概述廣義的分子標(biāo)記(molecularmar91DNA指紋分析研究是一種重要的分子標(biāo)記技術(shù)，它包括RFLP（restrictionfragmentlengthpolymorphism）、RAPD（randomlyamplifiedpolymorphicDNA）、AFLP（amplifiedfragmentlengthpolymorphism）、SSR（simplesequencerepeat）和ISSR（inter-simplesequencerepeat）等這些在PCR基礎(chǔ)上發(fā)展起來(lái)的檢測(cè)DNA多態(tài)性的分子標(biāo)記技術(shù)。DNA指紋分析研究是一種重要的分子標(biāo)記技術(shù)，它包括RFLP（92

分子標(biāo)記的優(yōu)越性表現(xiàn)為：（1）分子信息是可遺傳的，而只有在遺傳上可傳遞的屬性才能提供評(píng)估系統(tǒng)發(fā)育的信息；（2）數(shù)量極多，遍布整個(gè)基因組，可檢測(cè)座位幾乎無(wú)限；（3）分子標(biāo)記能提供共同的尺度；（4）分子數(shù)據(jù)能將從共同祖先遺傳下來(lái)的同源性和由于趨同進(jìn)化從不同祖先演變而來(lái)的相似性區(qū)分開(kāi)來(lái)表現(xiàn)為中性，不影響目標(biāo)性狀的表達(dá)；（5）任何生物有機(jī)質(zhì)包括動(dòng)物、植物和微生物有許多共同的分子屬性，因此分子數(shù)據(jù)可提供共同尺度來(lái)直接比較任何有機(jī)體任何分類(lèi)層次之間相對(duì)水平的遺傳變異；（6）分子標(biāo)記技術(shù)可應(yīng)用于各個(gè)生物門(mén)類(lèi)，并都可用于比較和綜合分析。分子標(biāo)記的優(yōu)越性表現(xiàn)為：（1）分子信息是93分子標(biāo)記的選擇理想的分子標(biāo)記應(yīng)該符合的標(biāo)準(zhǔn)是：多態(tài)性高；共顯性遺傳，在二倍體生物中能區(qū)分純合與雜合狀態(tài)；在基因組中頻繁出現(xiàn)，甚至貫穿分布于整個(gè)基因組；選擇中性；容易獲得；容易操作，自動(dòng)化程度高；重復(fù)性好；所獲得的數(shù)據(jù)能進(jìn)行交流和比較。分子標(biāo)記的選擇理想的分子標(biāo)記應(yīng)該符合的標(biāo)準(zhǔn)是：多態(tài)性高；共顯94二、蛋白質(zhì)標(biāo)記在蛋白質(zhì)多態(tài)性研究基礎(chǔ)上發(fā)展起來(lái)的分子標(biāo)記技術(shù)稱(chēng)為蛋白質(zhì)標(biāo)記，最常用的技術(shù)是蛋白質(zhì)電泳及與其配套的專(zhuān)一性染色，如曾經(jīng)廣為采用的等位酶分析，是通過(guò)同一基因位點(diǎn)上不同等位基因編碼的同種酶的不同分子形式，使得酶譜分析具有相關(guān)的遺傳學(xué)意義，酶譜的變化反應(yīng)了等位基因和位點(diǎn)的變化。等位酶技術(shù)為植物的種群遺傳學(xué)和進(jìn)化研究作出了重要的貢獻(xiàn)。但由于等位酶缺乏足夠的變異，在技術(shù)上存在一定的局限性，如今已逐漸被DNA標(biāo)記所取代。二、蛋白質(zhì)標(biāo)記在蛋白質(zhì)多態(tài)性研究基礎(chǔ)上發(fā)展起來(lái)的分子標(biāo)記技術(shù)95三、DNA分子標(biāo)記的種類(lèi)

分子標(biāo)記大多以電泳譜帶的形式表現(xiàn)，大致可分為三大類(lèi)。第一類(lèi)是以分子雜交為核心的分子標(biāo)記技術(shù)，包括：★限制性片段長(zhǎng)度多態(tài)性標(biāo)記（Restrictionfragmentlengthpolymorphism,簡(jiǎn)稱(chēng)RFLP標(biāo)記）；★DNA指紋技術(shù)（DNAFingerprinting）；★原位雜交（insituhybridization）等；三、DNA分子標(biāo)記的種類(lèi)分子標(biāo)記大多以電泳96

第二類(lèi)是以聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)（Polymerasechainreaction,簡(jiǎn)稱(chēng)PCR反應(yīng)）為核心的分子標(biāo)記技術(shù)，包括：

★隨機(jī)擴(kuò)增多態(tài)性DNA標(biāo)記（RandomamplificationpolymorphismDNA,簡(jiǎn)稱(chēng)RAPD標(biāo)記）；★簡(jiǎn)單序列重復(fù)標(biāo)記（Simplesequencerepeat,簡(jiǎn)稱(chēng)SSR標(biāo)記）或簡(jiǎn)單序列長(zhǎng)度多態(tài)性（Simplesequencelengthpolymorphism,簡(jiǎn)稱(chēng)SSLP標(biāo)記）；★擴(kuò)展片段長(zhǎng)度多態(tài)性標(biāo)記（Amplifiedfragmentlengthpolymorphism,簡(jiǎn)稱(chēng)AFLP標(biāo)記）；★序列標(biāo)簽位點(diǎn)（Sequencetaggedsites,簡(jiǎn)稱(chēng)STS標(biāo)記）；★序列特征化擴(kuò)增區(qū)域（Sequencecharacteredamplifiedregion,簡(jiǎn)稱(chēng)SCAR標(biāo)記）等；第二類(lèi)是以聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)（Polymera97

第三類(lèi)是一些新型的分子標(biāo)記，如：★單核苷酸多態(tài)性（Singlenuleotidepolymorphism,簡(jiǎn)稱(chēng)SNP標(biāo)記）；★表達(dá)序列標(biāo)簽（Expressedsequencestags,簡(jiǎn)稱(chēng)EST標(biāo)記）等。第三類(lèi)是一些新型的分子標(biāo)記，如：98四、分子標(biāo)記的特點(diǎn)（1）直接以DNA的形式表現(xiàn)，在生物體的各個(gè)組織、各個(gè)發(fā)育階段均可檢測(cè)到，不受季節(jié)、環(huán)境限制，不存在表達(dá)與否等問(wèn)題；（2）數(shù)量極多，遍布整個(gè)基因組，可檢測(cè)座位幾乎無(wú)限；（3）多態(tài)性高，自然界存在許多等位變異，無(wú)須人為創(chuàng)造；（4）表現(xiàn)為中性，不影響目標(biāo)性狀的表達(dá)；（5）許多標(biāo)記表現(xiàn)為共顯性的特點(diǎn)，能區(qū)別純合體和雜合體。四、分子標(biāo)記的特點(diǎn)（1）直接以DNA的形式99

一）限制性片段長(zhǎng)度多態(tài)性標(biāo)記（Restrictionfragmentlengthpolymorphism,RFLP）

該技術(shù)由Grodzicker等于1974年創(chuàng)立。

由于DNA分子中限制性?xún)?nèi)切酶酶切識(shí)別序列中出現(xiàn)堿基的插入、缺失、置換、倒位而導(dǎo)致酶切位點(diǎn)的增減所引起的基因型限制性片段長(zhǎng)度的差異。

五、常用的分子標(biāo)記第一類(lèi)分子標(biāo)記以分子雜交為核心的分子標(biāo)記技術(shù)一）限制性片段長(zhǎng)度多態(tài)性標(biāo)記（Restrictio100基因組DNA用已知的限制性?xún)?nèi)切酶消化后，產(chǎn)生許多大小不等的DNA片段，電泳分離、Southern印跡轉(zhuǎn)移到硝酸纖維膜上，用放射性標(biāo)記的探針與膜上變性的酶切DNA進(jìn)行雜交，放射自顯影，即可顯示出不同材料的多態(tài)性圖譜，即顯示出所分析的DNA序列間的RFLP。

基本原理基因組DNA用已知的限制性?xún)?nèi)切酶消化后，產(chǎn)生許多大小不等的D101基本步驟：DNA提取→用DNA限制性?xún)?nèi)切酶消化

→凝膠電泳分離限制性片段

→將這些片段按原來(lái)的順序和位置轉(zhuǎn)移到易操作的濾膜上

→用放射性同位素或非放射性物質(zhì)標(biāo)記的DNA作探針與膜上的DNA雜交（稱(chēng)Southern雜交）

→放射性自顯影或酶學(xué)檢測(cè)顯示出不同材料對(duì)該探針的限制性酶切片段多態(tài)性。

基本步驟：102動(dòng)植物生物體由不同的器官和組織構(gòu)成。應(yīng)選用生物體中生長(zhǎng)旺盛的器官、組織和細(xì)胞提取DNA，如植物幼苗或新長(zhǎng)出的葉片、動(dòng)物的血等。DNA提取的效果由DNA的質(zhì)量和得率來(lái)評(píng)價(jià)。選用適當(dāng)?shù)纳锲鞴俸徒M織是獲得高質(zhì)量和高得率DNA的保證。取樣后應(yīng)盡快在低溫中保存，長(zhǎng)時(shí)間保存應(yīng)在超低溫中保存。生物體樣品的選取動(dòng)植物生物體由不同的器官和組織構(gòu)成。應(yīng)選用生物體中生103作為DNA提取的開(kāi)始，多細(xì)胞的生物體樣品首先需要經(jīng)過(guò)研磨，使樣品破碎。然后樣品粉末再通過(guò)裂解液把細(xì)胞裂解。裂解液通常是由TrisTris（hydroxymethyl）aminomethane，即三羥基甲基氨基甲烷緩沖液加裂解劑組成，如SDS（Sodiumdodecylsulfate）即十二烷基磺酸鈉、CTAB（Hexadecyltrimethylammoniumbromide）即十六烷基三甲基溴化銨等。細(xì)胞的裂解作為DNA提取的開(kāi)始，多細(xì)胞的生物體樣品首先104

通常使用能使蛋白質(zhì)變性的試劑，如醋酸鉀、醋酸鈉、氯仿等。

通常使用RNA酶。蛋白質(zhì)的沉淀RNA的消化蛋白質(zhì)的沉淀RNA的消化105通常使用冰凍的異丙醇（2-ropanol）、70%乙醇等。

通常使用TE緩沖液（10mMTris，1mMEDTA，pH8.0，滅菌）。EDTA（didodiumethylenediaminetetra-acetate）即乙二胺四乙酸。

DNA沉淀DNA溶解通常使用冰凍的異丙醇（2-ropanol）、106電泳用的凝膠由瓊脂糖（agarose）制備，瓊脂糖的濃度通常為0.9-1.0%。酶切后的DNA樣品通過(guò)電泳，使DNA片段分離,并按分子量的大小排列。電泳電泳用的凝膠由瓊脂糖（agarose）制備，瓊107DNA從凝膠轉(zhuǎn)移到特制的雜交膜上，常用HybondN+（Amersham）的尼龍膜。

凝膠的處理：脫嘌呤處理：0.25MHCl變性處理：0.4MNaOH

DNA轉(zhuǎn)移：轉(zhuǎn)移液：0.4MNaOH。洗膜：洗膜液：2xSSC緩沖液

雜交膜的制備DNA從凝膠轉(zhuǎn)移到特制的雜交膜上，常用Hyb108用于RFLP分析的探針（probe）是DNA片段，長(zhǎng)度約0.5-2.5kb。探針的來(lái)源有：基因組的隨機(jī)片段、cDNA等。探針以克隆的方式保存，以質(zhì)粒（plasmid）為載體，如pUC19等，通過(guò)大腸桿菌繁殖。用于RFLP分析的探針（probe）是DNA109用作載體的質(zhì)粒必須具備三個(gè)特性：

一個(gè)復(fù)制起始點(diǎn)（Ori）；

一個(gè)顯性的選擇標(biāo)記，如氨芐青霉素（ampicillin）抗性基因（Ampr）；

單一的限制性酶切位點(diǎn)。載體載體110分子標(biāo)記技術(shù)課件111利用放射性同位素（32P-dCTP）等對(duì)探針進(jìn)行標(biāo)記，以跟蹤探針。同位素標(biāo)記：利用DNA聚合酶（Klenow），在DNA復(fù)制的過(guò)程中，把32P-dCTP合成到DNA片段上。探針的標(biāo)記(labeling)利用放射性同位素（32P-dCTP）等對(duì)探針112雜交液+鮭精DNA(shearedsalmonspermDNA,SSSDNA)雜交液: 20XSSPE 250ml 100XDenhardt’s 50ml 10%(w/v)SDS 50ml Makeupto 1000ml

65C保溫，2小時(shí)以上。預(yù)雜交雜交液+鮭精DNA(shearedsal113 A.2XSSC,0.1%SDS,65C,20min; B.1XSSC,0.1%SDS,65C,20min; C.0.5XSSC,0.1%SDS,65C,20min把已標(biāo)記的探針加入到雜交液中，加入經(jīng)預(yù)雜交的雜交膜。65C保溫，過(guò)夜。雜交洗膜 A.2XSSC,0.1%SDS,65C,20114用塑料薄膜把已雜交的雜交膜包起來(lái)。放入暗盒中。

放入X光片，緊壓。-80C冷柜中曝光2-4天。

在暗房中取出X光片，顯影、定影、沖冼。包膜照射顯影用塑料薄膜把已雜交的雜交膜包起來(lái)。放入暗盒中。包膜照115

A無(wú)表型效應(yīng)，RFLP標(biāo)記的檢測(cè)不受環(huán)境條件和發(fā)育階段的影響。BRFLP標(biāo)記在等位基因之間是共顯性的，因此在配制雜交組合時(shí)不受雜交方式的影響。C在非等位的RFLP標(biāo)記之間不存在上位效應(yīng)，因而互不干擾。DRFLP標(biāo)記起源于基因組DNA的自身變異，在數(shù)量上幾乎不受限制。EDNA需要量大，檢測(cè)技術(shù)繁雜，難以用于大規(guī)模的育種實(shí)踐中。在植物分子標(biāo)記輔助育種中需要將RFLP轉(zhuǎn)換成以PCR為基礎(chǔ)的標(biāo)記。RFLP優(yōu)點(diǎn)

A無(wú)表型效應(yīng)，RFLP標(biāo)記的檢測(cè)不受116

但RFLP分析需要比較完善的包括多種酶切、標(biāo)記、分子雜交等技術(shù)的實(shí)驗(yàn)室，加上工作量大、成本高以及放射性的問(wèn)題，使其應(yīng)用受到了一定的限制。但RFLP分析需要比較完善的包括多種酶切117ABAB限制性?xún)?nèi)切酶位點(diǎn)與放射性探針結(jié)合部位①限制性?xún)?nèi)切酶酶切后；②電泳分離DNA片段；③轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素薄膜；④與放射性探針雜交，⑤分析陽(yáng)性條帶ABAB限制性?xún)?nèi)切酶位點(diǎn)與放射性探針①限制性?xún)?nèi)切酶酶切后；118

一）隨機(jī)擴(kuò)增多態(tài)性

（randomamplifiedpolymorphismDNA，RAPD）

RAPD是1990年由美國(guó)杜邦公司的科學(xué)家Williams和加利福尼亞生物研究所Welsh幾乎同時(shí)發(fā)展起來(lái)的建立在PCR基礎(chǔ)上的一種新型的DNA分子標(biāo)記技術(shù)。第二類(lèi)分子標(biāo)記以聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)（PCR反應(yīng)）為核心的分子標(biāo)記技術(shù)一）隨機(jī)擴(kuò)增多態(tài)性

（randomamplified119基本原理采用隨機(jī)合成的寡核苷酸（通常10bp）作PCR反應(yīng)的引物，對(duì)所研究生物基因組DNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增，經(jīng)過(guò)30－40個(gè)循環(huán)，即可得到大量的DNA片段，擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳、EB染色、紫外下顯示RAPD帶紋。基本原理采用隨機(jī)合成的寡核苷酸（通常10bp）作P120由于整個(gè)基因組存在眾多反向重復(fù)序列，因此須對(duì)每一隨機(jī)引物單獨(dú)進(jìn)行PCR。單一引物與反向重復(fù)序列結(jié)合。使重復(fù)序列之間的區(qū)域得以擴(kuò)增。引物結(jié)合位點(diǎn)DNA序列的改變以及兩擴(kuò)增位點(diǎn)之間DNA堿基的缺失、插入或置換均可導(dǎo)致擴(kuò)增片段數(shù)目和長(zhǎng)度的差異，導(dǎo)致PCR產(chǎn)物增加、缺少或發(fā)生分子量變化。若PCR產(chǎn)物增加或缺少，則產(chǎn)生RAPD標(biāo)記。

由于整個(gè)基因組存在眾多反向重復(fù)序列，因此須對(duì)每一隨機(jī)引物單獨(dú)121技術(shù)路線DNA的提取

PCR反應(yīng)

凝膠電泳

選擇隨機(jī)引物

圖譜分析

技術(shù)路線DNA的提取PCR反應(yīng)凝膠電泳選擇隨機(jī)引物圖122與RFLP的比較相同之處：都從瓊脂糖凝膠上DAN條帶的多態(tài)性來(lái)反映基因結(jié)構(gòu)上的多態(tài)性；不同之處：RFLP用限制性?xún)?nèi)切酶消化DNA，通過(guò)分析限制性酶切片端的多態(tài)性，來(lái)顯示DNA的結(jié)構(gòu)的多態(tài)性；而RAPD是利用PCR技術(shù)從擴(kuò)增的DNA片段上分析多態(tài)性。由于片段被引物選擇地?cái)U(kuò)增，并不是所有序列都擴(kuò)增，擴(kuò)增了的片斷能在凝膠上清晰地顯現(xiàn)出來(lái)，這樣就可以通過(guò)同種引物擴(kuò)增條帶的多態(tài)性，反映出模板的多態(tài)性。與RFLP的比較相同之處：都從瓊脂糖凝膠上DAN條帶的多態(tài)性123與常規(guī)PCR的比較常規(guī)PCR需要兩個(gè)引物，每個(gè)引物分子15－30個(gè)核苷酸，引物順序根據(jù)擴(kuò)增的基因兩端的順序設(shè)計(jì)，因而要進(jìn)行PCR時(shí)，必需知道待擴(kuò)增基因的順序；RAPD分析時(shí)，只需一個(gè)引物，長(zhǎng)度10個(gè)核苷酸左右，引物順序是隨機(jī)的，因而可在對(duì)被檢對(duì)象無(wú)任何分子生物學(xué)資料的情況下對(duì)其基因組進(jìn)行分析。與常規(guī)PCR的比較常規(guī)PCR需要兩個(gè)引物，每個(gè)引物分子15－124（1）不需DNA探針，設(shè)計(jì)引物也無(wú)須知道序列信息；（2）顯性遺傳（極少數(shù)共顯性），不能鑒別雜合子和純合子；（3）技術(shù)簡(jiǎn)便，不涉及分子雜交和放射性自顯影等技術(shù)；（4）DNA樣品需要量少，引物價(jià)格便宜，成本較低；（5）實(shí)驗(yàn)重復(fù)性較差，結(jié)果可靠性較低。RAPD標(biāo)記的主要特點(diǎn)（1）不需DNA探針，設(shè)計(jì)引物也無(wú)須知道序列信息；RAPD標(biāo)125RAPD的缺點(diǎn)

RAPD圖譜中某些弱帶重復(fù)性較差，而且目前該法在引物長(zhǎng)度和序列及應(yīng)用的引物數(shù)目、擴(kuò)增反應(yīng)條件等實(shí)驗(yàn)技術(shù)方面未標(biāo)準(zhǔn)化，影響了不同條件下結(jié)果的可比性；每個(gè)標(biāo)記含有的信息量小；有假陽(yáng)性或假陰性結(jié)果；顯性標(biāo)記，無(wú)法區(qū)分從一個(gè)位點(diǎn)擴(kuò)增的DNA片段是純合的還是雜合的，無(wú)法進(jìn)行等位基因分析。用在種以上類(lèi)群間的比較時(shí)無(wú)法得到可靠的遺傳距離。RAPD的缺點(diǎn)RAPD圖譜中某些弱帶重復(fù)性較差，而且目前該126二）擴(kuò)增片段長(zhǎng)度多態(tài)性（Amplifiedrestrictionfragmentpolymorphism,AFLP）AFLP是1993年由荷蘭科學(xué)家Zabeau等人將PCR與RFLP結(jié)合起來(lái)，創(chuàng)造了AFLP分析技術(shù)。AFLP標(biāo)記是選擇性擴(kuò)增基因組DNA酶切片段所產(chǎn)生的擴(kuò)增產(chǎn)物的多態(tài)性，其實(shí)質(zhì)也是顯示限制性?xún)?nèi)切酶酶切片段的長(zhǎng)度多態(tài)性，只不過(guò)這種多態(tài)性是以擴(kuò)增片段的長(zhǎng)度不同被檢測(cè)出來(lái)。

二）擴(kuò)增片段長(zhǎng)度多態(tài)性（Amplifiedrestrict127基本原理首先用限制性?xún)?nèi)切酶酶解基因組DNA，形成許多大小不等的隨機(jī)限制性片段；接著在這些片段的兩端連接上特定的寡聚核苷酸接頭（Oligonuleotideadapter）；然后根據(jù)接頭序列設(shè)計(jì)引物，由于限制性片段太多，全部擴(kuò)增則產(chǎn)物難以在膠上分開(kāi)，為此在引物的3’端加入1-3個(gè)選擇性堿基，這樣只有那些能與選擇性堿基配對(duì)的片段才能與引物結(jié)合，成為模板被擴(kuò)增，從而達(dá)到對(duì)限制性片段進(jìn)行選擇擴(kuò)增的目的；最后通過(guò)聚丙烯酰胺凝膠電泳，將這些特異性的擴(kuò)增產(chǎn)物分離開(kāi)來(lái)。

基本原理首先用限制性?xún)?nèi)切酶酶解基因組DNA，形成許多大小不等128分子標(biāo)記技術(shù)課件129分子標(biāo)記技術(shù)課件130技術(shù)路線（1）首先要制備高分子量(HMW)基因組DNA，選擇6個(gè)堿基識(shí)別位點(diǎn)的限制性?xún)?nèi)切酶(通常是EcoRI或PstI或SacI)。（2）酶切后的限制性片段在T4連接酶的作用下與特定的接頭相連接，形成帶有接頭的特異性片段。（3）DNA片段的預(yù)擴(kuò)增。（4）在Taq聚合酶的作用下，完成AFLP的選擇性擴(kuò)增。（5）PCR產(chǎn)物變性后在含尿素的聚丙烯酰胺變性膠上電泳。（6）多態(tài)性比較分析，特異片段回收克隆分析。

技術(shù)路線（1）首先要制備高分子量(HMW)基因組DNA，選擇131AFLP結(jié)合了RFLP與PCR技術(shù)的特點(diǎn)，兼具RFLP和RAPD兩種方法的特長(zhǎng)，既繼承了RFLP的穩(wěn)定性，又具有了PCR反應(yīng)快速、靈敏的特點(diǎn)，同時(shí)克服了RFLP和RAPD的缺點(diǎn)。采用少數(shù)幾對(duì)引物的多種組合即可獲得大量遺傳信息，避免了RAPD分子標(biāo)記重復(fù)性差、假陽(yáng)性反應(yīng)過(guò)高等不利因素的影響，同時(shí)又無(wú)需任何目的基因組DNA的背景資料即可完成模板DNA多態(tài)性檢測(cè)，擺脫了RFLP的轉(zhuǎn)膜、克隆、探針制備、分子雜交等一系列繁重且又有一定難度的工作。AFLP結(jié)合了RFLP與PCR技術(shù)的特點(diǎn)，兼具RFLP和RA132用AFLP分析的多態(tài)性是典型的孟德?tīng)柺竭z傳和選擇中性。它可以用于遺傳分析的各個(gè)方面：如用于擬南芥屬連鎖圖的構(gòu)建用于馬鈴薯的