1、熒光定量PCR的原理及使用熒光定量PCR(FQ-PCR)是新近出現的一種定量PCR檢測方法。其基本特點是：1、用產生熒光信號的指示劑顯示擴增產物的量。2、熒光信號通過熒光染料嵌入雙鏈DNA，或雙重標記的序列特異性熒光探針或能量信號轉移探針等方法獲得，大大提高了檢測的靈敏度、特異性和精確性。3、動態實時連續熒光檢測，免除了標本和產物的污染，且無復雜的產物后續處理過程，高效、快速。下面介紹常用的幾種檢測方法：1、 雙鏈DNA內插染料某些染料如SYBR Green 能選擇性地與雙鏈DNA結合，同時產生強烈熒光。在PCR過程中SYBR Green 可與新合成的雙鏈DNA結合，產生的熒光信號與雙鏈DNA

2、成正比。SYBR Green I熒光染料技術原理SYBR Green I是一種只與DNA雙鏈結合的熒光染料。當它與DNA雙鏈結合時，發出熒光；從DNA雙鏈上釋放出來時，熒光信號急劇減弱。因此，在一個體系內，其信號強度代表了雙鏈DNA分子的數量。SYBR Green熒光染料法定量PCR的基本過程是：1、開始反應，當SYBR Green染料與DNA雙鏈結合時發出熒光。2、DNA變性時，SYBR Green染料釋放出來，熒光急劇減少。3、在聚合延伸過程中，引物退火并形成PCR產物。4、聚合完成后，SYBR Green染料與雙鏈產物結合，定量PCR系統檢測到熒光的凈增量加大。1 / 9SYBR Gre

3、en I熒光染料與DNA雙鏈的結合SYBR Green I熒光染料能與所有的DNA雙鏈相結合，對DNA模板沒有選擇性，所以特異性不如TaqMan探針。要想用熒光染料法得到比較好的定量結果，對PCR引物設計的特異性和PCR反應的質量要求就比較高。在此前提下，本法是一種成本低廉的選擇。2、 TaqMan探針技術原理TaqMan探針法是高度特異的定量PCR技術，其核心是利用Taq酶的35外切核酸酶活性，切斷探針，產生熒光信號。由于探針與模板是特異性結合，所以熒光信號的強弱就代表了模板的數量。在TaqMan探針法的定量PCR反應體系中，包括一對PCR引物和一條探針。探針只與模板特異性地結合，其結合位點

4、在兩條引物之間。探針的5端標記有報告基團(Reporter, R)，如FAM、VIC等，3端標記有熒光淬滅基團(Quencher, Q)，如TAMRA等。當探針完整的時候，報告基團所發射的熒光能量被淬滅基團吸收，儀器檢測不到信號。隨著PCR的進行，Taq酶在鏈延伸過程中遇到與模板結合的探針，其53外切核酸酶活性就會將探針切斷，報告基團遠離淬滅基團，其能量不能被吸收，即產生熒光信號。所以，每經過一個PCR循環，熒光信號也和目的片段一樣，有一個同步指數增長的過程。信號的強度就代表了模板DNA的拷貝數。5，TaqMan探針的熒光信號產生機制根據其3端標記的熒光淬滅基團的不同分為兩種：普通的TaqMa

5、n探針和TaqMan MGB探針。MGB探針的淬滅基團采用非熒光淬滅基團(Non-Fluorescent Quencher)，本身不產生熒光，可以大大降低本底信號的強度。同時探針上還連接有MGB (Minor Groove Binder)修飾基團，可以將探針的Tm值提高10°C左右。因此為了獲得同樣的Tm值，MGB探針可以比普通TaqMan探針設計得更短，既降低了合成成本，也使得探針設計的成功率大為提高。因為在模板的DNA堿基組成不理想的情況下，短的探針比長的更容易設計。實驗證明，TaqMan MGB探針對于富含A/T的模板可以區分得更為理想。 TaqMan MGB探針探針設計一般應

6、符合以下條件：1、探針長度應在2040個堿基左右，以保證結合的特異性。2、G、C堿基含量在40-60，避免單核苷酸序列的重復。3、避免與引物發生雜交或重疊。4、探針與模板結合的穩定程度要大于引物與模板結合的穩定程度，因此探針的Tm值要比引物的Tm值至少高出5。3、 分子信標技術分子信標技術（molecular beacon）也是在同一探針的兩末端分別標記熒光分子和淬滅分子，與TaqMan探針不同的是該探針5和3末端自身可形成一個8個堿基左右的發卡結構，此時熒光分子和淬滅分子鄰近，因此不會產生熒光。當溶液中有特異模板時，該探針與模板雜交，從而破壞了探針的發卡結構即FRET消失，于是溶液便產生熒光

7、，熒光的強度與溶液中模板的量成正比，因此可用于PCR定量分析。 Ct 值的含義是:每個反應管內的熒光信號達到設定的域值時所經歷的循環數。研究表明 ,每個模板的 Ct 值與該模板的起始拷貝數的對數存在線性關系 ,起始拷貝數越多 ,Ct值越小。利用已知起始拷貝數的標準品可作出標準曲線 ,因此只要獲得未知樣品的 Ct 值 ,即可從標準曲線上計算出該樣品的起始拷貝數。1、雙鏈DNA內插染料 常用的是SYBR Green I熒光染料，其技術原理：SYBR Green I是一種只與DNA雙鏈結合的熒光染料。當它與DNA雙鏈結合時，發出熒光；從DNA雙鏈上釋放出來時，熒光信號急劇減弱。因此，在一個體系內，其

8、信號強度代表了雙鏈DNA分子的數量。SYBR Green熒光染料法定量PCR的基本過程是：1、開始反應，當SYBR Green染料與DNA雙鏈結合時發出熒光。2、DNA變性時，SYBR Green染料釋放出來，熒光急劇減少。3、在聚合延伸過程中，引物退火并形成PCR產物。4、聚合完成后，SYBR Green染料與雙鏈產物結合，定量PCR系統檢測到熒光的凈增量加大。熒光染料檢測法一般主要是利用熒光染料(如SYBR Green I)與雙鏈DNA分子結合發光的特性來指示擴增產物的增加，優點是：無需另外設計熒光探針，無需特別優化條件，簡便易行，成本較低，能適用于任何一款定量PCR儀。熒光染料法實質上是

9、常規的PCR反應中添加了熒光染料，借助染料和雙鏈DNA的結合所發出的熒光實時監控反應的進程。由于不需要設計序列特異性探針和優化反應條件，價格低廉，通用性強，而且熒光染料法可用于任何一種型號的定量PCR儀，因而同樣得到廣泛采用。在PCR反應體系中，加入過量SYBR Green I熒光染料，SYBR熒光染料摻入DNA雙鏈后熒光信號顯著增強；當DNA變性時SYBR Green I染料釋放出來，熒光急劇減少；隨后在聚合延伸過程中引物退火并形成PCR產物，SYBR Green染料與雙鏈產物結合，經檢測獲得熒光的凈增量。熒光信號的增加與PCR產物的增加完全同步。熒光染料可以在反應末尾對擴增產物進行溶解，稱為溶解曲線分析。在溶解曲線分析過程中，隨著溫度從低于產物溶解點緩慢升到高于產物溶解點，定量PCR儀連續監測每個樣品的熒光值。基于產物長度和G/C含量的不同，擴增產物會在不同的溫度點解鏈。隨著產物的解鏈就可以看到熒光值的降低并被儀器所測量。對溶解曲線進行微分可以計算出溶解峰。溶解峰可以反映反應中擴增到的產物，因此用溶解曲線數據就可以進行定量檢測了。將強毒株H2的RNA模板做10倍倍比稀釋后，用紫外分光光度計測定其濃度，然后按下面的公式轉換成模板的拷貝數：拷貝數=NDV模板濃度×阿氏常數(一個堿基的平均分子量×NDV模板的總長度)