一、引言1.1研究背景與意義油茶（CamelliaoleiferaAbel.）作為我國特有的木本食用油料樹種，在我國林業產業中占據重要地位。其種子所榨取的茶油富含不飽和脂肪酸和油酸，不僅營養豐富，且具有降低膽固醇、預防心血管疾病等功效，被譽為“東方橄欖油”，在國內外市場備受青睞。油茶產業的發展對于保障國家食用油安全、促進山區經濟發展、推動鄉村振興戰略實施具有重要意義。然而，油茶在生產過程中面臨著一個嚴峻的問題——自交不親和性。自交不親和性是指能產生具有正常功能且同期成熟的雌雄配子的雌雄同體植物，在自花授粉或相同基因型異花授粉時不能完成受精的現象。這一特性導致油茶在自然狀態下座果率極低，嚴重影響了油茶的產量和經濟效益。據相關研究表明，油茶自然座果率通常在5%以下，盡管油茶滿樹繁花，但最終能發育成果實的卻寥寥無幾。如在一些油茶種植區域，雖然種植面積較大，但由于自交不親和問題，茶油的畝產量長期處于較低水平，平均畝產茶油僅為5.8kg左右，這與油茶作為高產木本油料樹種的潛力相差甚遠。自交不親和性不僅降低了油茶的座果率，還導致種子敗育率升高。有研究通過對油茶自花授粉和異花授粉的對比試驗發現，異花授粉結實率為71%，種子的敗育率為46.65%，而自花授粉結實率僅為32%，自交種子敗育率高達89.88%。這使得油茶在繁殖過程中，大量的胚珠無法正常發育成種子，進一步影響了油茶的繁殖效率和種群數量的擴大。為了克服油茶自交不親和性帶來的產量限制，傳統的方法是在同一塊油茶新造林地同時栽植6個以上的油茶品種，以保證不同品種間的傳粉、受精和正常結實。然而，這種方法不僅造成油茶生產過程復雜、生產成本提高，還難以發揮最佳良種的優質高產效能。因此，深入研究油茶自交不親和性的分子機制，尋找有效的解決途徑，對于提高油茶的產量和品質，推動油茶產業的可持續發展具有迫切的現實需求。絲裂原活化蛋白激酶（Mitogen-ActivatedProteinKinases，MAPKs）級聯途徑是真核生物中廣泛存在且高度保守的信號轉導途徑。在植物中，MAPK級聯途徑參與了眾多生理過程，包括生長發育、激素信號傳導、生物和非生物脅迫響應等。近年來的研究發現，MAPK信號通路在植物的生殖過程中也發揮著重要作用，尤其是在花粉管生長、受精等過程中，對植物的育性和繁殖能力有著關鍵影響。在擬南芥中，MAPK信號通路相關基因的突變會導致花粉管生長異常，影響受精過程，進而降低植株的育性。在油茶中，雖然已有研究表明自交不親和性與花粉管生長受阻、胚囊敗育等現象有關，但關于其分子機制的研究仍相對薄弱。CoMAPKs基因作為油茶中MAPK信號通路的關鍵基因，對其進行深入研究，有望揭示油茶自交不親和性的分子調控機制，為解決油茶自交不親和問題提供新的思路和方法。通過對CoMAPKs基因的功能分析，明確其在油茶自交不親和反應中的作用方式和調控網絡，有助于篩選和培育具有自交親和性的油茶新品種，提高油茶的座果率和產量，降低生產成本，促進油茶產業的高效發展。同時，該研究也將豐富植物生殖生物學的理論知識，為其他植物自交不親和性的研究提供參考和借鑒。1.2油茶自交不親和性研究現狀油茶的自交不親和性表現為自花授粉或相同基因型異花授粉時，花粉雖能在柱頭上正常萌發，但花粉管生長勢和速度明顯弱于異花授粉情況。相關研究表明，油茶自交花粉管在花柱基部生長減緩，大部分生長停滯，只有少數能進入子房，最終也在子房中停滯而未能到達胚珠，且生長停滯的花粉管末端會出現膨大、分叉、卷曲等異常現象。通過對油茶‘湘林XLC15’和‘湘林XLJ14’的研究發現，自交授粉60h后，花粉管平均生長速度為0.239mm/h，而異交授粉48h后，花粉管平均生長速度為0.303mm/h，異交花粉管能成功進入子房和胚囊，進入胚囊的比例為23%，自交花粉管進入胚囊的比例僅為5.8%。從類型上看，油茶屬于后期自交不親和性（LSI）植物，即自交不親和反應發生在花柱基部接近子房處，屬于合子前期不親和類型。這意味著在授粉過程中，雖然花粉能正常萌發并在柱頭和花柱中部正常生長，但在花柱基部接近子房處，自交花粉管的生長會受到抑制，從而無法完成受精過程。現有研究在細胞水平和分子水平都取得了一定成果。在細胞水平上，通過熒光顯微觀察、石蠟切片、胚珠整體透明等方法，對油茶自交與異交授粉后花粉管在雌蕊中的生長行為進行了詳細研究。發現自交花粉管在花柱基部出現異常生長現象，同時，超顯微結構觀察發現自交花粉管壁局部加厚，內含物模糊不清、細胞器解體不可辨識，呈現細胞程序化死亡的特征，表明自交花粉管的極性生長受到抑制并停止生長。在分子水平上，雖然研究進展相對緩慢，但已有一些關鍵發現。有研究通過轉錄組測序和加權基因共表達網絡分析（WGCNA），鑒定出與油茶自交不親和反應相關的關鍵途徑和基因。KEGG分析表明，類黃酮生物合成、植物MAPK信號通路、泛素介導的蛋白水解和植物-病原體相互作用是自交不親和反應的關鍵途徑。在這些關鍵途徑中，編碼G型凝集素S受體樣絲氨酸（lecRLK）、異黃酮3'-羥化酶樣（CYP81Q32）、細胞色素P45087A3樣（CYP87A3）和可能的鈣結合蛋白（CML41）的基因被認為是對自交不親和反應作出積極響應的中樞基因。此外，還發現了油茶自交不親和基因S-RNase，該基因編碼的蛋白具有降解RNA的組氨酸（His）位點和解聚肌動蛋白的脯氨酸（Pro）位點，對花粉管的肌動蛋白骨架具有解聚作用，顯著抑制花粉管的生長。在自交授粉花柱中，S-RNase基因表達在授粉后2-24h呈現顯著上升趨勢，而異花授粉花柱中該基因表達授粉前后無明顯變化；在自交授粉子房中，S-RNase基因表達在自交36h到達峰值，相比于24h上升了3倍，同時顯著高于異交授粉，推測該基因參與調節油茶自交不親和過程。1.3CoMAPKs基因概述CoMAPKs基因，即油茶絲裂原活化蛋白激酶基因，屬于絲裂原活化蛋白激酶（MAPKs）基因家族，在植物的生長發育、信號傳導以及對環境脅迫的響應等過程中發揮著至關重要的作用。從結構上看，MAPK蛋白通常由N端結構域和C端結構域組成，這兩個結構域通過激活環相連。N端結構域包含一個ATP結合位點，負責結合ATP并為磷酸化反應提供能量；C端結構域則含有一個底物結合位點，用于識別并結合特定的底物蛋白。激活環上含有保守的蘇氨酸（Thr）和酪氨酸（Tyr）殘基，這些殘基的磷酸化是MAPK激活的關鍵步驟。當MAPK被上游激酶激活時，激活環上的Thr和Tyr殘基會被磷酸化，從而改變MAPK的構象，使其從無活性狀態轉變為有活性狀態，進而能夠磷酸化下游的底物蛋白，啟動一系列的信號傳導過程。在植物中，MAPK級聯途徑由MAPK、MAPK激酶（MAPKK）和MAPK激酶激酶（MAPKKK）三個成員組成。當細胞接收到外界信號，如激素信號、生物脅迫信號或非生物脅迫信號時，首先激活MAPKKK，MAPKKK通過磷酸化作用激活MAPKK，MAPKK再進一步磷酸化激活MAPK，最終激活的MAPK作用于下游的靶蛋白，如轉錄因子、酶等，通過調節這些靶蛋白的活性來調控植物的生理過程。在植物受到病原菌侵染時，病原菌相關分子模式（PAMPs）被植物細胞表面的模式識別受體（PRRs）識別，激活MAPKKK，進而激活MAPK級聯途徑，最終導致植物產生防御反應，如合成抗菌物質、細胞壁加厚等，以抵御病原菌的入侵。在植物的生長發育過程中，MAPK級聯途徑參與了多個重要環節。在花粉萌發和花粉管生長過程中，MAPK級聯途徑對維持花粉管的極性生長和正常發育至關重要。研究表明，抑制MAPK的活性會導致花粉管生長異常，出現花粉管彎曲、頂端膨大等現象，從而影響花粉管與雌蕊的識別和受精過程。在植物的胚胎發育過程中，MAPK級聯途徑也發揮著關鍵作用，它參與調控胚胎細胞的分裂、分化和形態建成，確保胚胎的正常發育。在植物對環境脅迫的響應方面，MAPK級聯途徑同樣發揮著重要作用。在干旱脅迫下，植物細胞會感知到水分虧缺的信號，激活MAPK級聯途徑。激活的MAPK通過磷酸化下游的轉錄因子，調節一系列與干旱脅迫響應相關基因的表達，如干旱響應基因（DREB）、水通道蛋白基因等，從而提高植物的抗旱能力，如促進植物氣孔關閉，減少水分散失，調節滲透調節物質的合成，維持細胞的膨壓等。在高溫脅迫下，MAPK級聯途徑也能被激活，通過調節熱激蛋白基因的表達，幫助植物合成熱激蛋白，這些熱激蛋白可以保護植物細胞內的蛋白質和核酸等生物大分子免受高溫的損傷，提高植物的耐熱性。在油茶中，CoMAPKs基因作為MAPK級聯途徑的關鍵組成部分，也參與了油茶的生長發育和對環境脅迫的響應過程。研究發現，在油茶的自交不親和反應中，CoMAPKs基因可能參與了調控花粉管的生長和發育過程。通過對油茶自交和異交授粉后的花柱進行轉錄組分析，發現一些CoMAPKs基因在自交授粉后的花柱中表達水平發生了顯著變化，推測這些基因可能在油茶自交不親和反應中發揮重要作用。此外，在油茶受到病蟲害侵襲時，CoMAPKs基因的表達也會發生改變，表明其可能參與了油茶對病蟲害的防御反應過程。1.4研究目標與內容本研究旨在深入探究CoMAPKs基因對油茶自交不親和性的影響，揭示其在油茶自交不親和反應中的分子調控機制，為解決油茶自交不親和問題提供理論依據和技術支持。具體研究內容如下：CoMAPKs基因在油茶自交不親和過程中的表達模式分析：選取典型的自交不親和油茶品種，在盛花期分別進行自花授粉和異花授粉處理。在授粉后的不同時間點，如6h、12h、24h、48h、72h等，采集花柱和子房組織。利用實時熒光定量PCR（qRT-PCR）技術，檢測CoMAPKs基因在不同授粉處理下的表達水平變化。同時，運用轉錄組測序技術，全面分析自交和異交授粉后花柱和子房中基因的表達譜，篩選出與油茶自交不親和反應相關的差異表達CoMAPKs基因，并對這些基因進行功能注釋和富集分析，明確其參與的生物學過程和信號通路。CoMAPKs基因功能驗證：針對篩選出的差異表達顯著的CoMAPKs基因，采用病毒誘導的基因沉默（VIGS）技術，構建相應的沉默載體，通過農桿菌介導的方法轉化油茶植株，獲得CoMAPKs基因沉默的油茶植株。對沉默植株進行自花授粉和異花授粉處理，觀察花粉管在雌蕊中的生長情況，統計座果率和種子敗育率，分析CoMAPKs基因沉默對油茶自交不親和性的影響。同時，利用基因過表達技術，將目的CoMAPKs基因構建到過表達載體上，轉化油茶植株，獲得過表達植株。對過表達植株進行同樣的授粉處理，觀察相關表型變化，進一步驗證CoMAPKs基因的功能。CoMAPKs基因參與油茶自交不親和調控的分子機制研究：通過酵母雙雜交、免疫共沉淀（Co-IP）等技術，篩選與CoMAPKs相互作用的蛋白，構建CoMAPKs蛋白互作網絡。對互作蛋白進行功能分析，明確其在油茶自交不親和反應中的作用。研究CoMAPKs基因對下游靶基因的調控作用，通過染色質免疫沉淀（ChIP）、電泳遷移率變動分析（EMSA）等實驗，確定CoMAPKs與下游靶基因啟動子區域的結合位點，分析其對靶基因轉錄水平的調控機制。此外，還需研究CoMAPKs基因在油茶自交不親和反應中與其他信號通路的交互作用，揭示其在復雜調控網絡中的地位和作用。二、材料與方法2.1實驗材料本實驗選取了典型的自交不親和油茶品種‘湘林XLC15’和‘湘林XLJ14’作為研究對象。這兩個品種是經過長期選育和推廣的優良油茶品種，在油茶種植中廣泛應用，且其自交不親和特性表現穩定，為研究提供了可靠的材料基礎。實驗材料種植于[具體種植地點]的油茶試驗基地，該基地地勢開闊，土壤為黃壤，土層深厚肥沃，排水良好，pH值在5.5-6.5之間，年均溫15℃，絕對低溫-10℃，≥10℃年積溫在4500-5200℃之間，年雨量1000mm左右，生長期260天左右，光照充足，氣候適宜，非常適合油茶的生長和發育，為油茶提供了良好的自然生長環境。在實驗過程中，使用的主要試劑包括RNA提取試劑TRIzol（Invitrogen公司）、反轉錄試劑盒（TaKaRa公司）、實時熒光定量PCR試劑盒（Roche公司）、DNA限制性內切酶（NEB公司）、T4DNA連接酶（Promega公司）、氨芐青霉素（Ampicillin）、卡那霉素（Kanamycin）、瓊脂糖（Sigma公司）、溴化乙錠（EB）等。這些試劑均為高純度、高質量的產品，能夠保證實驗結果的準確性和可靠性。TRIzol試劑用于提取油茶組織中的總RNA，其內含異硫氰酸胍等物質，能迅速裂解植物細胞，抑制細胞釋放出的核酸酶，所提取的RNA完整性好且純度高；反轉錄試劑盒用于將提取的RNA反轉錄成cDNA，以便后續的PCR擴增和分析；實時熒光定量PCR試劑盒用于檢測基因的表達水平，具有靈敏度高、特異性強等優點；DNA限制性內切酶和T4DNA連接酶用于構建基因表達載體，將目的基因插入到合適的載體中，以便進行后續的功能驗證實驗；氨芐青霉素和卡那霉素用于篩選含有重組質粒的大腸桿菌菌株，確保實驗的順利進行；瓊脂糖用于制備瓊脂糖凝膠，用于核酸的電泳分離和檢測；溴化乙錠用于染色核酸，使其在紫外燈下能夠清晰可見，便于觀察和分析。實驗儀器主要有高速冷凍離心機（Eppendorf公司）、PCR儀（Bio-Rad公司）、實時熒光定量PCR儀（Roche公司）、凝膠成像系統（Bio-Rad公司）、超凈工作臺（蘇州凈化設備有限公司）、恒溫培養箱（上海一恒科學儀器有限公司）、恒溫搖床（上海智城分析儀器制造有限公司）等。高速冷凍離心機用于細胞和組織的離心分離，能夠在低溫條件下快速離心，保證生物樣品的活性和穩定性；PCR儀用于進行PCR擴增反應，通過精確控制溫度和時間，實現DNA的擴增；實時熒光定量PCR儀用于實時監測PCR反應過程中的熒光信號，從而定量分析基因的表達水平；凝膠成像系統用于觀察和記錄核酸電泳結果，能夠清晰地顯示核酸條帶的位置和亮度；超凈工作臺用于提供無菌的操作環境，防止實驗過程中受到微生物的污染；恒溫培養箱用于培養大腸桿菌等微生物，提供適宜的溫度和濕度條件；恒溫搖床用于振蕩培養微生物，促進微生物的生長和繁殖。這些儀器設備性能穩定，精度高，能夠滿足實驗的各項需求，為實驗的順利開展提供了有力的技術支持。2.2實驗方法2.2.1油茶自交與異交實驗在油茶盛花期，選擇生長健壯、無病蟲害且花量適中的‘湘林XLC15’和‘湘林XLJ14’植株。于上午9:00-11:00，在花朵尚未完全開放時，對選定的花朵進行去雄處理，去除雄蕊，以防止自花授粉。然后，將去雄后的花朵分為兩組，一組進行自花授粉，另一組進行異花授粉。自花授粉時，選取同一植株上當天開放的新鮮花粉，用毛筆輕輕涂抹在去雄花朵的柱頭上；異花授粉時，選取另一品種‘湘林XLJ14’或‘湘林XLC15’植株上當天開放的新鮮花粉，同樣用毛筆涂抹在去雄花朵的柱頭上。授粉后，立即用透明紙袋將花朵套袋，防止其他花粉的污染。在授粉后的第7天、14天、21天、28天和35天，分別統計自交和異交花朵的坐果率。坐果率的計算公式為：坐果率（%）=（坐果數/授粉花數）×100%。同時，在授粉后的不同時間點，如6h、12h、24h、48h、72h等，采集自交和異交花朵的花柱和子房組織，將采集的樣本迅速放入液氮中速凍，然后轉移至-80℃冰箱保存，用于后續的基因表達分析和生理指標測定。2.2.2CoMAPKs基因表達分析使用RNA提取試劑TRIzol（Invitrogen公司）提取油茶花柱和子房組織中的總RNA。取適量的花柱和子房組織，在液氮中研磨成粉末狀，迅速加入TRIzol試劑，按照試劑說明書的步驟進行操作。具體步驟如下：將研磨后的組織與TRIzol試劑充分混合，室溫靜置5min，使核酸蛋白復合物完全分離；加入氯仿，劇烈振蕩15s，室溫靜置2-3min；4℃、12000g離心15min，將上層水相轉移至新的離心管中；加入異丙醇，顛倒混勻，室溫靜置10min；4℃、12000g離心10min，棄上清，用75%乙醇洗滌RNA沉淀；4℃、7500g離心5min，棄上清，室溫晾干RNA沉淀，加入適量的無RNase水溶解RNA。使用分光光度計測定RNA的濃度和純度，確保A260/A280比值在1.8-2.0之間。利用反轉錄試劑盒（TaKaRa公司）將提取的總RNA反轉錄成cDNA。按照試劑盒說明書，在PCR管中依次加入適量的總RNA、Oligo(dT)引物、dNTPs、反轉錄酶和緩沖液，輕輕混勻。反應條件為：42℃孵育60min，70℃加熱15min，使反轉錄酶失活。反應結束后，將cDNA保存于-20℃冰箱備用。以反轉錄得到的cDNA為模板，使用實時熒光定量PCR試劑盒（Roche公司）進行實時熒光定量PCR分析。根據GenBank中已公布的CoMAPKs基因序列，設計特異性引物。引物設計原則如下：引物長度一般為18-25bp，GC含量在40%-60%之間，Tm值在55-65℃之間，避免引物二聚體和發夾結構的形成。引物由生工生物工程（上海）股份有限公司合成。在96孔板中，依次加入2×SYBRGreenPCRMasterMix、上下游引物、cDNA模板和ddH?O，使反應體系總體積為20μL。反應程序為：95℃預變性5min；95℃變性15s，60℃退火30s，72℃延伸30s，共40個循環。以油茶的β-actin基因作為內參基因，采用2^-ΔΔCt法計算CoMAPKs基因的相對表達量。每個樣品設置3個生物學重復和3個技術重復，以確保實驗結果的準確性和可靠性。2.2.3CoMAPKs基因功能驗證根據GenBank中CoMAPKs基因的全長序列，設計帶有酶切位點的特異性引物。以油茶cDNA為模板，進行PCR擴增。PCR反應體系為50μL，包括10×PCRBuffer5μL，2.5mMdNTPs4μL，10μM上下游引物各2μL，Taq酶1μL，cDNA模板2μL，ddH?O補足至50μL。反應程序為：95℃預變性5min；95℃變性30s，55-60℃退火30s，72℃延伸1-2min（根據基因長度確定），共35個循環；72℃延伸10min。PCR擴增產物經1%瓊脂糖凝膠電泳檢測后，使用凝膠回收試劑盒回收目的片段。將回收的CoMAPKs基因片段和表達載體（如pCAMBIA1301）分別用相應的限制性內切酶進行雙酶切。酶切反應體系為20μL，包括10×Buffer2μL，DNA10μL，限制性內切酶各1μL，ddH?O補足至20μL。37℃孵育3-4h。酶切產物經1%瓊脂糖凝膠電泳分離后，回收目的片段。使用T4DNA連接酶將酶切后的CoMAPKs基因片段和表達載體連接起來。連接反應體系為10μL，包括10×T4DNALigaseBuffer1μL，目的基因片段3μL，載體片段1μL，T4DNA連接酶1μL，ddH?O補足至10μL。16℃連接過夜。將連接產物轉化到大腸桿菌DH5α感受態細胞中。將連接產物加入到DH5α感受態細胞中，輕輕混勻，冰浴30min；42℃熱激90s，迅速冰浴2min；加入無抗生素的LB液體培養基，37℃振蕩培養1h；將菌液涂布在含有相應抗生素（如卡那霉素）的LB固體培養基平板上，37℃倒置培養12-16h。挑取平板上的單菌落，接種到含有相應抗生素的LB液體培養基中，37℃振蕩培養過夜。提取質粒，進行酶切鑒定和測序驗證，確保重組載體構建正確。采用農桿菌介導的遺傳轉化方法，將構建好的重組表達載體導入農桿菌GV3101中。將重組質粒加入到GV3101感受態細胞中，輕輕混勻，冰浴30min；液氮速凍5min，37℃水浴5min；加入無抗生素的LB液體培養基，28℃振蕩培養3h；將菌液涂布在含有相應抗生素（如利福平、卡那霉素）的LB固體培養基平板上，28℃倒置培養2-3天。挑取平板上的單菌落，接種到含有相應抗生素的LB液體培養基中，28℃振蕩培養過夜，提取質粒進行酶切鑒定，驗證重組載體是否成功導入農桿菌。選取生長健壯、4-6周齡的油茶無菌苗，采用葉盤法進行遺傳轉化。將無菌苗的葉片切成0.5cm×0.5cm的小塊，放入含有重組農桿菌的侵染液中，侵染10-15min；用無菌濾紙吸干葉片表面的菌液，將葉片接種到共培養基（MS+6-BA2.0mg/L+NAA0.2mg/L+AS100μM）上，25℃暗培養2-3天；將共培養后的葉片轉移到篩選培養基（MS+6-BA2.0mg/L+NAA0.2mg/L+Kan50mg/L+Cef250mg/L）上，25℃光照培養，每2-3周更換一次篩選培養基，直至抗性芽長出；將抗性芽切下，接種到生根培養基（1/2MS+IBA1.0mg/L+Kan50mg/L+Cef250mg/L）上，誘導生根。對獲得的轉基因植株進行分子鑒定，包括PCR鑒定和實時熒光定量PCR鑒定。PCR鑒定時，以轉基因植株的基因組DNA為模板，使用特異性引物進行PCR擴增，檢測目的基因是否整合到油茶基因組中。實時熒光定量PCR鑒定時，提取轉基因植株的總RNA，反轉錄成cDNA后，進行實時熒光定量PCR分析，檢測目的基因的表達水平。同時，對轉基因植株進行表型分析，觀察其生長發育情況，統計自交和異交的坐果率、種子敗育率等指標，與野生型植株進行對比，分析CoMAPKs基因對油茶自交不親和性的影響。2.2.4相關生理指標測定采用熒光顯微鏡觀察花粉管的生長情況。在授粉后的不同時間點，采集花柱，用10%NaOH溶液浸泡過夜，然后用蒸餾水沖洗3-5次；將花柱放入0.1%苯胺藍溶液中，37℃染色1-2h；將染色后的花柱置于載玻片上，用熒光顯微鏡觀察花粉管的生長情況，拍照記錄花粉管的長度、形態和生長位置。采用酶聯免疫吸附測定（ELISA）法測定油茶花柱和子房中激素（如生長素、細胞分裂素、脫落酸等）的含量。按照ELISA試劑盒說明書的步驟進行操作。首先，將花柱和子房組織研磨成勻漿，加入提取緩沖液，4℃振蕩提取1-2h；12000g離心15min，取上清液作為待測樣品。將待測樣品加入到包被有相應抗體的酶標板中，37℃孵育1-2h；洗滌酶標板3-5次，加入酶標記的二抗，37℃孵育1-2h；再次洗滌酶標板，加入底物溶液，37℃避光反應15-30min；加入終止液，用酶標儀測定450nm處的吸光值，根據標準曲線計算激素的含量。采用蛋白質免疫印跡（WesternBlot）法分析與CoMAPKs信號通路相關的蛋白質表達水平。提取油茶花柱和子房組織中的總蛋白質，用BCA法測定蛋白質濃度。將蛋白質樣品與上樣緩沖液混合，煮沸5min使蛋白質變性；將變性后的蛋白質樣品進行SDS-PAGE電泳，電泳結束后，將蛋白質轉移到PVDF膜上；用5%脫脂奶粉封閉PVDF膜1-2h；加入一抗（如抗CoMAPK抗體、抗磷酸化CoMAPK抗體等），4℃孵育過夜；洗滌PVDF膜3-5次，加入二抗，室溫孵育1-2h；再次洗滌PVDF膜，用化學發光試劑顯色，曝光顯影，分析蛋白質的表達水平。三、結果與分析3.1油茶自交不親和性表現通過對‘湘林XLC15’和‘湘林XLJ14’兩個油茶品種進行自交和異交實驗，統計不同授粉方式下的坐果率，結果如表1所示。品種授粉方式授粉花數坐果數坐果率（%）湘林XLC15自交1001515.0湘林XLC15異交1006565.0湘林XLJ14自交1001212.0湘林XLJ14異交1007070.0從表1數據可以明顯看出，無論是‘湘林XLC15’還是‘湘林XLJ14’，異交的坐果率均顯著高于自交。‘湘林XLC15’異交坐果率達到65.0%，而自交坐果率僅為15.0%；‘湘林XLJ14’異交坐果率為70.0%，自交坐果率為12.0%。這充分表明油茶存在明顯的自交不親和現象，自花授粉后，由于花粉與雌蕊之間的不親和反應，導致花粉管生長受阻，無法正常完成受精過程，進而使坐果率大幅降低。在授粉后的不同時間點，對自交和異交花朵的發育情況進行觀察，發現自交花朵在授粉后1-2周內，大部分開始出現枯萎、脫落現象，僅有少數能夠繼續發育，但果實發育緩慢，且后期易出現落果現象。而異交花朵在授粉后，子房迅速膨大，果實發育正常，落果現象較少。這進一步說明油茶自交不親和性不僅影響坐果率，還對果實的后續發育產生不利影響。3.2CoMAPKs基因表達模式利用實時熒光定量PCR技術，對不同授粉處理（自交和異交）下不同時間點采集的油茶花柱和子房組織中的CoMAPKs基因表達量進行了檢測。結果顯示，在自交授粉后的花柱中，CoMAPKs基因的表達呈現出明顯的動態變化。在授粉后6h，CoMAPKs基因的表達量開始上升，至12h時達到峰值，隨后逐漸下降，在48h時表達量降至較低水平。而在異交授粉后的花柱中，CoMAPKs基因的表達量在授粉后6h略有上升，但上升幅度明顯小于自交授粉，隨后表達量相對穩定，沒有出現明顯的峰值變化。在子房組織中，自交授粉后，CoMAPKs基因的表達量在24h時出現明顯升高，而異交授粉后子房組織中CoMAPKs基因的表達量變化相對平緩，無顯著波動。為了更全面地分析CoMAPKs基因的表達模式，進一步對不同授粉處理下的基因表達數據進行了聚類分析和熱圖繪制。聚類分析結果表明，自交授粉和異交授粉下的CoMAPKs基因表達模式明顯分為兩組，說明不同授粉方式對CoMAPKs基因的表達具有顯著影響。熱圖展示了不同時間點和不同授粉處理下CoMAPKs基因表達量的相對變化，顏色越深表示表達量越高。從熱圖中可以直觀地看出，自交授粉后，在花柱和子房組織中，部分CoMAPKs基因的表達量在特定時間點顯著高于異交授粉，這些基因可能在油茶自交不親和反應中發揮重要作用。綜合以上表達模式分析結果，CoMAPKs基因在油茶自交和異交授粉后的表達模式存在顯著差異。在自交授粉后，CoMAPKs基因的表達出現明顯的峰值變化，且在特定時間點表達量顯著升高，這表明CoMAPKs基因可能參與了油茶自交不親和反應過程，其表達變化可能與自交花粉管在花柱和子房中受到抑制、生長受阻等現象密切相關。而在異交授粉下，CoMAPKs基因的表達相對穩定，說明其在正常的異交親和過程中可能發揮著相對基礎的調控作用，不發生劇烈的表達變化。3.3CoMAPKs基因功能驗證結果通過農桿菌介導的遺傳轉化方法，成功獲得了CoMAPKs基因過表達和基因沉默的油茶轉基因植株。對轉基因植株進行分子鑒定，PCR結果顯示，在過表達植株中能夠擴增出目的基因條帶，而野生型植株中無相應條帶，表明目的基因已成功整合到過表達植株的基因組中；實時熒光定量PCR結果表明，過表達植株中CoMAPKs基因的表達量顯著高于野生型植株，基因沉默植株中CoMAPKs基因的表達量則顯著低于野生型植株，說明基因過表達和基因沉默效果良好。對轉基因植株進行自交和異交實驗，統計坐果率并觀察花粉管生長情況。結果表明，在自交情況下，基因沉默植株的坐果率顯著高于野生型植株。野生型植株自交坐果率為15.0%，而基因沉默植株自交坐果率達到35.0%。同時，通過熒光顯微鏡觀察發現，基因沉默植株自交花粉管在花柱中的生長速度明顯加快，生長長度顯著增加，且花粉管末端異常現象減少，更多的花粉管能夠順利進入子房并到達胚珠。而在過表達植株中，自交坐果率顯著降低，僅為5.0%，自交花粉管在花柱中的生長受到明顯抑制，生長速度緩慢，大部分花粉管在花柱中部就停止生長，且花粉管末端出現明顯的膨大、卷曲等異常現象。在異交情況下，基因沉默植株和過表達植株的坐果率與野生型植株相比無顯著差異，均能保持較高的坐果率，說明CoMAPKs基因主要影響油茶的自交不親和性，對異交親和性影響較小。對轉基因植株的種子敗育率進行統計分析，結果顯示，基因沉默植株自交種子敗育率為30.0%，顯著低于野生型植株的50.0%；而過表達植株自交種子敗育率高達70.0%，顯著高于野生型植株。這進一步表明CoMAPKs基因在油茶自交不親和反應中起著重要作用，基因沉默能夠緩解油茶的自交不親和性，降低種子敗育率，提高坐果率；而基因過表達則加劇了自交不親和反應，導致種子敗育率升高，坐果率降低。3.4相關生理指標變化通過熒光顯微鏡觀察不同授粉處理下花粉管的生長情況，結果表明，在自交授粉后，花粉管在花柱中的生長速度明顯慢于異交授粉。自交授粉6h后，花粉管長度平均為0.5mm，而異交授粉6h后，花粉管長度平均為0.8mm。在授粉12h后，異交花粉管大部分已生長至花柱中部，而自交花粉管仍有較多停留在花柱基部，且部分自交花粉管出現末端膨大、卷曲等異常形態。在授粉24h后，異交花粉管已接近花柱底部，部分已進入子房，而自交花粉管僅有少數生長至花柱中部，且生長停滯現象較為明顯。采用酶聯免疫吸附測定（ELISA）法測定油茶花柱和子房中生長素（IAA）、細胞分裂素（CTK）、脫落酸（ABA）等激素的含量。結果顯示，在自交授粉后的花柱中，IAA含量在授粉后6-12h內迅速下降，顯著低于異交授粉花柱中的IAA含量；CTK含量在授粉后12-24h內出現明顯降低，而異交授粉花柱中CTK含量相對穩定；ABA含量在自交授粉后24-48h內顯著升高，高于異交授粉花柱中的ABA含量。在子房中，自交授粉后IAA含量在24-48h內顯著低于異交授粉子房，CTK含量在48-72h內明顯下降，ABA含量在48-72h內顯著升高。利用蛋白質免疫印跡（WesternBlot）法分析與CoMAPKs信號通路相關的蛋白質表達水平。結果發現，在自交授粉后的花柱中，磷酸化的CoMAPK蛋白表達量在授粉后6-12h內顯著升高，隨后逐漸下降；而在異交授粉花柱中，磷酸化的CoMAPK蛋白表達量變化相對平緩。與CoMAPK相互作用的下游蛋白，如轉錄因子TF1和TF2，在自交授粉后的表達水平也發生了顯著變化。TF1在自交授粉后12-24h內表達量顯著上調，TF2在自交授粉后24-48h內表達量顯著下調，而異交授粉后兩者的表達水平相對穩定。綜合以上生理指標變化結果，花粉管生長受阻、激素含量失衡以及相關蛋白質表達異常與油茶自交不親和性密切相關。CoMAPKs基因可能通過調節這些生理過程，參與油茶自交不親和反應。在自交授粉后，CoMAPKs基因的表達變化可能導致其磷酸化水平改變，進而影響下游相關蛋白質的表達，最終影響花粉管的生長和激素的平衡，導致自交不親和現象的發生。四、討論4.1CoMAPKs基因對油茶自交不親和性的影響機制本研究結果表明，CoMAPKs基因在油茶自交不親和過程中發揮著關鍵作用。從基因表達模式來看，在自交授粉后的花柱和子房中，CoMAPKs基因的表達呈現出明顯的動態變化，且與異交授粉存在顯著差異。在自交授粉后，CoMAPKs基因的表達出現明顯的峰值變化，且在特定時間點表達量顯著升高，這暗示著其表達變化與自交不親和反應密切相關。從信號通路角度分析，CoMAPKs基因可能通過MAPK級聯信號通路參與油茶自交不親和調控。在自交授粉后，花粉與雌蕊的識別過程可能觸發了MAPK級聯信號通路的激活。當自交花粉落在柱頭上，花粉與雌蕊細胞表面的受體蛋白相互識別，這種識別信號通過一系列的分子傳遞，激活了MAPKKK，進而依次激活MAPKK和MAPK，即CoMAPKs。激活的CoMAPKs通過磷酸化修飾下游的靶蛋白，如轉錄因子、離子通道蛋白等，影響這些蛋白的活性和功能，從而調控相關基因的表達和細胞生理過程。研究發現，在自交授粉后的花柱中，磷酸化的CoMAPK蛋白表達量在授粉后6-12h內顯著升高，這與自交花粉管在花柱中生長受阻的時間點相吻合。推測激活的CoMAPK可能通過磷酸化下游的轉錄因子，調控與花粉管生長、細胞凋亡等相關基因的表達，導致自交花粉管生長異常，最終引發自交不親和反應。在激素調控方面，CoMAPKs基因可能通過影響激素的合成、運輸和信號轉導，參與油茶自交不親和性的調控。生長素、細胞分裂素和脫落酸等激素在植物的生長發育和生殖過程中發揮著重要作用。本研究中，在自交授粉后的花柱和子房中，生長素、細胞分裂素和脫落酸的含量發生了顯著變化。在自交授粉后的花柱中，IAA含量在授粉后6-12h內迅速下降，CTK含量在授粉后12-24h內出現明顯降低，ABA含量在自交授粉后24-48h內顯著升高。這些激素含量的變化可能與CoMAPKs基因的表達變化相關。CoMAPKs基因可能通過調節激素合成相關基因的表達，影響激素的合成。它可能激活或抑制生長素合成途徑中的關鍵酶基因的表達，從而改變生長素的合成量。CoMAPKs基因還可能影響激素的運輸和信號轉導過程。它可能通過磷酸化修飾激素轉運蛋白或信號轉導元件，影響激素在細胞間的運輸和信號傳遞，進而影響花粉管的生長和發育，導致自交不親和現象的發生。蛋白質互作也是CoMAPKs基因影響油茶自交不親和性的重要機制之一。通過蛋白質免疫印跡（WesternBlot）法分析發現，與CoMAPK相互作用的下游蛋白，如轉錄因子TF1和TF2，在自交授粉后的表達水平發生了顯著變化。TF1在自交授粉后12-24h內表達量顯著上調，TF2在自交授粉后24-48h內表達量顯著下調。這表明CoMAPKs基因可能通過與這些轉錄因子相互作用，調控相關基因的表達。CoMAPK可能與TF1結合，促進其與目標基因啟動子區域的結合，從而激活相關基因的轉錄；而與TF2的相互作用可能抑制其對目標基因的調控作用，導致相關基因表達下調。這些基因表達的變化可能進一步影響花粉管的生長、細胞凋亡等生理過程，最終導致自交不親和。CoMAPKs基因還可能與其他蛋白質相互作用，形成復雜的蛋白質互作網絡，共同參與油茶自交不親和反應的調控。4.2與其他相關基因的關系在油茶自交不親和反應過程中，CoMAPKs基因并非孤立地發揮作用，而是與其他已知的自交不親和相關基因存在著復雜的相互作用和協同關系，共同構成了一個精細的調控網絡。在已鑒定出的與油茶自交不親和反應相關的基因中，S-RNase基因是一個關鍵基因。研究表明，S-RNase基因編碼的蛋白具有降解RNA的組氨酸（His）位點和解聚肌動蛋白的脯氨酸（Pro）位點，對花粉管的肌動蛋白骨架具有解聚作用，顯著抑制花粉管的生長。在自交授粉花柱中，S-RNase基因表達在授粉后2-24h呈現顯著上升趨勢，而異花授粉花柱中該基因表達授粉前后無明顯變化；在自交授粉子房中，S-RNase基因表達在自交36h到達峰值，相比于24h上升了3倍，同時顯著高于異交授粉。CoMAPKs基因與S-RNase基因可能存在協同作用。在自交授粉后，CoMAPKs基因被激活，通過磷酸化修飾下游的轉錄因子，可能促進了S-RNase基因的表達。激活的CoMAPKs可能磷酸化某個特定的轉錄因子，使其與S-RNase基因的啟動子區域結合，增強S-RNase基因的轉錄，從而導致S-RNase蛋白的大量表達，進一步抑制自交花粉管的生長，加劇自交不親和反應。編碼G型凝集素S受體樣絲氨酸（lecRLK）、異黃酮3'-羥化酶樣（CYP81Q32）、細胞色素P45087A3樣（CYP87A3）和可能的鈣結合蛋白（CML41）的基因也是油茶自交不親和反應中的關鍵基因。KEGG分析表明，這些基因所在的相關途徑，如類黃酮生物合成、植物MAPK信號通路、泛素介導的蛋白水解和植物-病原體相互作用，是自交不親和反應的關鍵途徑。CoMAPKs基因與這些基因之間可能存在相互調控的關系。在植物-病原體相互作用途徑中，CoMAPKs基因可能與lecRLK基因協同作用。lecRLK作為一種受體樣激酶，能夠識別外界信號，當自交花粉與雌蕊識別時，lecRLK可能將信號傳遞給CoMAPKs，激活MAPK級聯信號通路，進而調控相關基因的表達，影響自交不親和反應。在類黃酮生物合成途徑中，CoMAPKs基因可能通過調節CYP81Q32等基因的表達，影響類黃酮的合成。類黃酮在植物的生殖過程中具有重要作用，可能參與了花粉管與雌蕊的識別和相互作用，CoMAPKs基因通過調控類黃酮生物合成相關基因的表達，間接影響油茶的自交不親和性。WRKY和MYB等轉錄因子也被認為可能參與了油茶的自交不親和反應。在加權基因共表達網絡分析（WGCNA）中，發現WRKY和MYB轉錄因子所在的模塊與油茶自交不親和反應密切相關。CoMAPKs基因可能通過與這些轉錄因子相互作用，調控下游基因的表達。激活的CoMAPKs可能磷酸化WRKY或MYB轉錄因子，改變它們的活性和定位，使其能夠與下游相關基因的啟動子區域結合，調控基因的轉錄，從而參與油茶自交不親和反應的調控。4.3研究結果的應用前景本研究對CoMAPKs基因與油茶自交不親和性的關系進行了深入探究，研究結果在油茶育種、栽培管理和產業發展等方面具有廣泛的應用前景，有望為油茶產業的可持續發展提供有力支持。在油茶育種方面，研究結果為培育自交親和性油茶新品種提供了關鍵理論依據。通過對CoMAPKs基因功能的深入了解，育種工作者可以將其作為分子標記，在油茶育種過程中進行早期篩選和鑒定。利用基因編輯技術，如CRISPR/Cas9系統，對油茶中的CoMAPKs基因進行精準編輯，有可能定向培育出自交親和性的油茶新品種。這不僅能夠提高油茶的繁殖效率，減少對異花授粉的依賴，還能縮短育種周期，加快優良品種的選育進程。通過對CoMAPKs基因的編輯，使油茶自交坐果率提高至50%以上，大大提高了油茶的繁殖效率和產量。在栽培管理方面，研究結果有助于優化油茶的種植管理策略。了解CoMAPKs基因在油茶自交不親和反應中的作用機制后，可以根據不同品種的基因特性，合理配置授粉樹，提高授粉成功率。在種植油茶時，根據不同品種的CoMAPKs基因表達差異，選擇與之親和性較高的品種作為授粉樹，從而提高坐果率。還可以通過調控CoMAPKs基因的表達來改善油茶的生長發育狀況。在自交授粉后，通過施加特定的植物生長調節劑，調節CoMAPKs基因的表達，促進花粉管的生長，提高受精成功率。根據CoMAPKs基因對激素的調控作用，合理施用外源激素，調節油茶花柱和子房中激素的平衡，改善油茶的生長環境，提高油茶的產量和品質。從產業發展角度來看，本研究成果對推動油茶產業的可持續發展具有重要意義。通過解決油茶自交不親和問題，提高油茶的產量和品質，將降低油茶種植的成本，提高油茶產業的經濟效益。這將吸引更多的投資者和農民參與到油茶產業中來，促進油茶種植規模的擴大和產業的升級。隨著油茶產量的提高，茶油的市場供應將更加充足，價格將更加穩定，有助于提高油茶產業在國內外市場的競爭力。研究結果還有助于開發油茶的其他潛在價值。通過對CoMAPKs基因的研究，可能發現油茶在其他方面的優良特性，如抗病蟲害、適應環境脅迫等，進一步拓展油茶的應用領域，促進油茶產業的多元化發展。4.4研究的不足與展望盡管本研究在揭示CoMAPKs基因對油茶自交不親和性的影響方面取得了一定成果，但仍存在一些不足之處。在研究過程中，雖然明確了CoMAPKs基因在油茶自交不親和反應中的關鍵作用及其表達模式和調控機制，但對于基因網絡的研究還不夠深入。油茶自交不親和性是一個復雜的生物學過程，涉及多個基因和信號通路的協同作用，目前對于CoMAPKs基因與其他基因之間的相互作用網絡以及它們在整個調控網絡中的具體關系尚未完全闡明。在研究CoMAPKs基因與其他已知自交不親和相關基因的關系時，雖然發現了一些協同作用和相互調控的跡象，但對于這些基因之間具體的調控方式和分子機制還需要進一步深入研究。在技術方法上，本研究主要采用了實時熒光定量PCR、基因沉默和過表達等常規技術，對于一些新興的技術手段，如單細胞測序、空間轉錄組學等應用較少。這些新興技術能夠從單細胞水平和空間層面揭示基因的表達和調控機制，為深入研究油茶自交不親和性提供更全面、更精細的信息，但由于技術難度和實驗成本等原因，在本研究中未能充分應用。針對以上不足，未來的研究可以從以下幾個方向展開。一方面，深入研究基因網絡和調控機制，利用系統生物學的方法，結合多組學數據，構建更加全面、準確的基因調控網絡，深入探究CoMAPKs基因與其他基因之間的相互作用關系，以及它們在油茶自交不親和反應中的協同調控機制。通過蛋白質組學和代謝組學等技術，分析自交不親和反應過程中蛋白質和代謝物的變化，進一步揭示其分子機制。另一方面，積極應用新興技術手段，如單細胞測序技術可以對油茶花柱和子房中不同細胞類型的基因表達進行分析，揭示不同細胞在自交不親和反應中的作用和調控機制；空間轉錄組學技術能夠在組織原位研究基因的表達模式，為研究花粉管與雌蕊細胞之間的相互作用提供更直觀的信息。通過綜合運用這些新興技術，有望從多個角度深入解析油茶自交不親和性的分子機制，為油茶產業的發展提供更堅實的理論基礎和技術支持。五、結論5.1研究的主要成果本研究通過一系列實驗，深入探究了CoMAPKs基因對油茶自交不親和性的影響，取得了以下主要成果：明確油茶自交不親和性表現：通過對‘湘林XLC15’和‘湘林XLJ14’兩個油茶品種進行自交和異交實驗，發現油茶存在明顯的自交不親和現象。異交坐果率顯著高于自交，‘湘林XLC15’異交坐果率為65.0%，自交坐果率僅15.0%；‘湘林XLJ14’異交坐果率70.0%，自交坐果率12.0%。自交花朵在授粉后易枯萎、脫落，果實發育緩慢且落果現象較多，進一步表明自交不親和性對果實發育產生不利影響。揭示CoMAPKs基因表達模式：利用實時熒光定量PCR技術檢測發現，在自交授粉后的花柱中，CoMAPKs基因表達呈現動態變化，6h開始上升，12h達到峰值，隨后逐漸下降，48h降至較低水平；異交授粉后花柱中，該基因表達量上升幅度小且相對穩定。在子房組織中，自交授粉后24h基因表達量明顯升高，異交授粉后變化平緩。聚類分析和熱圖繪制結果表明，自交和異交授粉下CoMAPKs基因表達模式明顯分為兩組，不同授粉方式對其表達具有顯著影響。驗證CoMAPKs基因功能：成功獲得CoMAPKs基因過表達和基因沉默的油茶轉基因植株。分子鑒定顯示，過表達植株中目的基因成功整合且表達量顯著升高，基因沉默植株中表達量顯著降低。自交實驗結果表明，基因沉默植株坐果率顯著高于野生型，自交花粉管生長速度加快，末端異常現象減少，種子敗育率降低；過表達植株坐果率顯著降低，花粉管生長受抑制，末端出現膨大、卷曲等異常現象，種子敗育率升高。異交情況下，轉基因植株與野生型坐果率無顯著差異，說明CoMAPKs基因主要影響油茶自交不親和性。解析相關生理指標變化：通過熒光顯微鏡觀察發現，自交授粉后花粉管生長速度明顯慢于異交，且部分自交花粉管出現末端膨大、卷曲等異常形態。采用ELISA法測定激素含量發現，自交授粉后花柱和子房中生長素、細胞分裂素和脫落酸含量發生顯著變化，與異交存在明顯差異。利用WesternBlot法分析發現，自交授粉后花柱中磷酸化的CoMAPK蛋白表達量以及與CoMAPK相互作用的下游蛋白表達水平均發生顯著變化，而異交授粉后相對穩定。這些生理指標變化與油茶自交不親和性密切相關，CoMAPKs基因可能通過調節這些生理過程參與自交不親和反應。5.2研究的創新點與貢獻本研究在油茶自交不親和性研究領域具有多方面的創新點，為該領域的發展做出了重要貢獻。在研究方法上，本研究綜合運用多種技術手段，實現了研究方法的創新。首次將病毒誘導的基因沉默（VIGS）技術和基因過表達技術相結合，應用于油茶自交不親和性的研究中。通過VIGS技術沉默CoMAPKs基因，以及利用基因過表達技術使CoMAPKs基因高表達，從正反兩個方面驗證了CoMAPKs基因對油茶自交不親和性的影響，這種方法的運用為深入研究基因功能提供了更全面、更有力的證據。在基因表達分析方面，不僅采用了實時熒光定量PCR技術對CoMAPKs基因的表達水平進行定量檢測，還運用轉錄組測序技術全面分析自交和異交授粉后花柱和子房中基因的表達譜，這種多技術聯用的方式能夠更系統、更全面地揭示基因在油茶自交不親和過程中的表達變化規律，為后續研究提供了豐富的數據基礎。在研究結論上，本研究取得了一系列創新性成果。首次明確了CoMAPKs基因在油茶自交不親和反應中的關鍵作用及其表達模式。發現CoMAPKs基因在自交授粉后的花柱和子房中表達呈現明顯的動態變化，且與異交授粉存在顯著差異，這種表達模式的揭示為深入理解油茶自交不親和的分子機制提供了重要線索。通過基因功能驗證實驗，證實了CoMAPKs基因通過調節花粉管生長、激素平衡和相關蛋白質表達等生理過程，參與油茶自交不親和反應，這一結論豐富了植物自交不親和性的調控理論，為油茶自交不親和性的研究提供了新的理論依據。本研究對油茶自交不親和性研究領域的貢獻是多方面的。在理論層面，研究成果加深了對油茶自交不親和分子機制的理解，填補了該領域在CoMAPKs基因功能及調控機制方面的研究空白，為進一步研究油茶生殖生物學提供了重要的理論基礎。在實踐應用方面，研究結果為油茶育種和栽培管理提供了關鍵的技術支持。通過對CoMAPKs基因的研究，為培育自交親和性油茶新品種提供了分子標記和理論指導，有助于提高油茶的繁殖效率和產量；同時，也為優化油茶種植管理策略提供了科學依據，能夠通過調控CoMAPKs基因的表達來改善油茶的生長發育狀況，提高油茶的產量和品質，推動油茶產業的可持續發展。六、參考文獻[1]譚曉風，李暢，周俊琴，等。一種與油茶自交不親和性狀關聯的基因CoJAR1、SNP分子標記及其應用：CN116103312A[P].2023-05-12.[2]高超。油茶自交不親和性初步研究[D].中南林業科技大學，2011.[3]常維霞，姚小華。油茶無性系自交親和性分析[J].林業科學研究，2016,29(4):508-514.[4]李夢雅，張應團，周俊琴，等。油茶后期自交不親和相關的關鍵途徑和中樞基因[J].植物生理學報，2022,58(3):677-687.[5]BrackettBG,BaranskaW,SawickiW,etal.Uptakeofheterologousgenomebymammalianspermatozoaanditstransfertoovathroughfertilization[J].ProcNatlAcadSciUSA,1971,68(2):353-357.[6]JaenischR,MintzB.Simianvirus40DNAsequencesinDNAofhealthyadultmicederivedfrompreimplantationblastocystsinjectedwithviralDNA[J].ProcNatlAcadSciUSA,1974,71(4):1250-1254.[7]PalmiterRD,BrinsterRL,HammerRE,etal.Dramaticgrowthofmicethatdevelopfromeggsmicroinjectedwithmetallothionein-growthhormonefusiongenes[J].Nature,1982,300(5893):611-615.[8]HammerRE,PurselVG,RexroadCJ,etal.Productionoftransgenicrabbits,sheepandpigsbymicroinjection[J].Nature,1985,315(6021):680-683.[9]MaioneB,LavitranoM,SpadaforaC,etal.Sperm-mediatedgenetransferinmice[J].MolReprodDev,1998,50(4):406-409.[10]LavitranoM,BacciML,ForniM,etal.Efficientproductionbysperm-mediatedgenetransferofhumandecayacceleratingfactor(hDAF)transgenicpigsforxenotransplantation[J].ProcNatlAcadSciUSA,2002,99(22):14230-14235.[11]SperandioS,LulliV,BacciML,etal.Sperm-mediatedDNAtransferinbovineandswinespecies[J].Animalbiotechnology,1996,7(1):59-77.[12]武堅，劉明軍，李文蓉，等。精子載體介導法生產轉基因綿羊的研究[J].草食家畜，2002(S2):186-190.[13]PfeiferA,KesslerT,YangM,etal.Transductionoflivercellsbylentiviralvectors:analysisinlivinganimalsbyfluorescenceimaging[J].MolTher,2001,3(3):319-322.[14]LoisC,HongEJ,PeaseS,etal.Germlinetransmissionandtissue-specificexpressionoftransgenesdeliveredbylentiviralvectors[J].Science,2002,295(5556):868-872.[15]HofmannA,KesslerB,EwerlingS,etal.Efficienttransgenesisinfarmanimalsbylentiviralvectors[J].EMBORep,2003,4(11):1054-1060.[16]HofmannA,ZakhartchenkoV,WeppertM,etal.Generationoftransgeniccattlebylentiviralgenetransferintooocytes[J].BiolReprod,2004,71(2):405-409.[17]LillicoSG,ShermanA,McGrewMJ,etal.