目錄

前言.............................................................3-4

實驗一蛙坐骨神經-腓腸肌標本制作...............................5-6

實驗二不同強度和頻率的刺激對肌肉收縮的影響.....................7-8

實驗三ABO血型鑒定...........................................9

實驗四影響血液凝固的因素......................................10

實驗五蛙心灌流................................................11-12

實驗六呼吸運動的調節..........................................13

實驗七動脈血壓的神經體液調節..................................14-15

實驗八消化道平滑肌生理特性....................................16-17

實驗九尿生成的影響因素........................................18

前百

一、生理實驗課的目的：

1、初步掌握生理學實驗的基本操作技術，了解獲得生理學知識的科學方法。

2、驗證和鞏固生理學的基本理論。

3、培養科學作風和分析解決問題的能力。

二、生理實驗課的要求：

1.實驗前：仔細閱讀實驗手冊，復習有關理論。做到充分理解，預測該實驗各

個步驟應得的結果和可能發生的誤差。

2.實驗中：器材安放整齊，認真循序操作，注意安全，嚴格遵守規章制度。嚴

密地、全面地觀察實驗中出現的現象，隨時記錄，并聯系講授內容進行思考。

3.實驗后：整理和清洗實驗用品，如有損壞應報告授課教師。必須在授課教師清

點檢查過儀器和器械后，方可離開。整理實驗記錄，按要求撰寫實驗報告。各組

按順序輪流值日，整理衛生，取送動物。

4.實驗過程中要嚴格遵守實驗室規則。

三、生理實驗課的重要性和特點：

1、實踐是知識的來源.生理學的理論均來源于實際觀察，而且必須通過設計完

善的實驗來檢驗、修正和發展。

2、通過實踐，可鍛煉觀察問題、務析問題、解決問題的能力。在實驗過程中培

養科學工作的嚴肅態度、嚴格的要求、嚴密的工作方法和實事求是的工作作風。

3、生理實驗理論性很強，與形態課區別較大，具有一定的趣味性。

四、生理實驗課的基本原理：

為了了解生命的某些規律，必須設計特定的實驗，選取符合條件的動物或

標本（實驗對象）。通過改變作用于實驗對象的某些實驗條件（實驗因素），觀察

實驗對象的某些生命活動的變化（實驗效應或指標）.來分析總結和作出正確的判

斷。以上三者即為實驗的三個基本要素。

1.為了獲得理想的實驗結果，必須選用健康的動物。動物的種類和性別應根據

實驗內容加以選擇，使其解剖生理特點盡量符合實驗要求。

2.施于實驗對象的實驗因素，對于細胞和組織來說，相當于某種刺激，要考慮

作用的強度，時間和范圍。生理學常用的是電刺激，這是因為電刺激的參數易于

控制，很少造成損傷。選用化學刺激（包括藥物）時，要考慮作用時間和是否影響

后續實驗因素。慎重安排作用時間長，不可逆的實驗因素。

3.要選用能說明問題，并且易于觀察與記錄的實驗指標。生理學要觀察的現象

多種多樣，一部分為生物電信號，易于引導記錄，是生理學常用的指標。另一部

分為非電信號（如血壓）則須使用換能器，轉變為電信號后記錄，或者直接用杠桿

來記錄。信號小的要利用放大器放大后記錄。頻率高的信號常用示波器，頻率低

的常用筆式記錄儀。

4.實驗結果的分析：實驗中得到的結果數據是原始資料，分為計數和計量兩大

類，計量的結果應以正確的具體的單位和數值來定量分析，不能只簡單地提示。

以曲線記錄的實驗，除應標注說明，作好標記外，要就頻率、節律、幅度和基線

做出定量分析。有的實驗為了比較和分析的方便，可用表格和繪圖來表示實驗結

果。

五、生理實驗報告的寫作要求：

1.注明姓名、班級、組別、日期、操作者.

2.實驗題目、目的、簡要方法（包括儀器，藥品等）.

3.實驗結果是實驗中最重要的部分，應該忠實，正確地記述實驗過程中所觀察

到的現象。一定隨時記錄，不可單憑記憶，否則容易發生錯誤或遺漏。

4.實驗結果的討論是根據已知的理論對結果進行的解釋和分析，判斷結果是否

為預期結果，非預期的結果要分析可能的原因，還要指出實驗結果的生理意義。

5.實驗結論中一般不要羅列具體的結果，而是本實驗結果中能夠歸納出一般的,

概括性的判斷，即這一實驗所能驗證的概念、原則或理論的簡明總結。不能充分

證明的理論分析不應寫入結論。

實驗一坐骨神經-腓腸肌標本制作

【實驗目的】學習生理學實驗基本的組織分離技術；學習和掌握制備蛙類坐骨神經-腓腸肌

標本的方法；了解刺激的種類。

【實驗對象】蛙

【實驗器材與試劑】

任氏液、蛙類手術器械一套、金屬探針（解剖針）、玻璃分針、蛙板（或玻璃板）、蛙釘、

細線、培養皿、滴管、鋅銅弓。

【實驗方法與步驟】

1.破壞腦、脊髓取蛙一只，用自來水沖洗干凈。左手握住蛙，使其背部向上，用大拇指或

食指使頭前俯。右手持探針由頭顱后緣的枕骨大孔處垂直進針。然后將探針向前刺入顱腔，

左右擺動探針數次，搗毀腦組織。再將探針退回至枕骨大孔，使針尖轉向后，刺入椎管，搗

毀脊髓。若腦和脊髓破壞完全，蛙呼吸運動消失,四肢完全松軟，失去一切反射活動。如蛙

仍有反射活動，表示腦和脊髓破壞不徹底，應重新如上法破壞。

2.剪除軀干上部及內臟用左手捏住蟾蛛的脊柱，右手持粗剪刀在舐骼關節水平以上

0.5—1.0cm處橫斷脊柱，連同皮膚、腹肌、脊柱一并剪斷，然后左手握住蛙后肢，用拇指壓

住舐骨.使其頭與前肢自然下垂，沿脊柱兩側剪除蛙的一切內臟及頭胸部，注意不要傷及坐

骨神經干。

3.剝皮左手捏住脊柱的斷端，右手捏住其皮膚的邊緣，向下剝去全部后肢的皮膚。將標本放

在盛有任氏液的培養皿中。將手及使用過的探針、剪刀全部沖洗干凈。

4.分離兩腿分離脊柱兩側坐骨神經干，左手捏住脊柱斷端，右手用粗剪刀剪去突出的舐骨。

然后沿恥骨聯合將脊柱盆骨分為兩半。將一半后肢標本置于盛有任氏液培養皿中備用，另一

半放在蛙板上備用?

5.游離坐骨神經①制成坐骨神經-小腿的標本左手捏住脊柱斷端，將坐骨神經連同2?3

節脊椎用粗剪刀從脊柱上剪下來。用鐐子輕輕提起脊住，自上而下剪去神經分支，直至胴窩

（圖5T-3A）,并搭放在腓腸肌上。沿膝關節剪去股骨周圍的肌肉，并將股骨刮凈，用粗剪

刀剪斷股骨中部，制成坐骨神經-小腿的標本。②完成坐骨神經腓腸肌標本將脊住和坐骨

神經從腓腸肌上取下，分離小腿腓腸肌，用結扎線固定跟腱部。用粗剪刀剪去膝關節以下部

分，保留腓腸肌，便制成了坐骨神經-腓腸肌標本（圖5T-3B）。

6.檢驗標本活性用沾有任氏液的鋅銅弓觸及一下（或電刺激刺激）坐骨神經或用鑲子夾持

坐骨神經中樞端，如腓腸肌收縮，說明標本的興奮性良好。標本浸入盛有任氏液的培養皿中

備用。

注意事項：

1.避免蛙血液污染標本，壓擠、損傷和用力牽拉標本，不可用金屬器械觸碰神經干。

2.在操作過程中，應給神經和肌肉滴加任氏液，防止表面干燥，以免影響標本的興奮性。

3.標本制成后須放在任氏液中浸泡數分鐘,使標本興奮性穩定,再開始實驗效果會較好。

思考題：用各種刺激檢驗標本興奮性時，為什么要從中樞端開始？

實驗二不同強度和頻率的刺激對肌肉收縮的影響

【實驗目的】

本實驗在保持足夠的刺激時間（脈沖波寬）不變的條件下，通過逐步增加對蟾除坐骨神經

的刺激強度（脈沖振幅）和改變電脈沖刺激頻率觀察刺激頻率和強度對肌肉收縮的影響。通過

實踐操作學習PcLab生物信號采集處理系統的使用方法。

【實驗器材與試劑】蟾蛛或蛙，蛙板，玻璃棒，探針，粗剪刀，細剪刀，尖鑲子，玻璃分

針，大頭針，任氏液，鐵支架，張力換能器，瓷碗，培養皿，微機生物信號采集處理儀。

【實驗內容與方法】

1.毀腦脊髓取蟾蛛一只，用左手握住，以食指壓其頭部前端使頭部盡量前俯，右手持探

針自枕骨大孔處垂直刺入，到達椎管，并將探針改變方向刺向顱腔，向各側不斷攪動，徹底

搗毀腦組織。再將探針原路退出，刺向尾側，捻動探針使逐漸刺入整個椎管內，搗毀脊髓。

此時蟾除下頜呼吸運動應消失，四肢松軟，即成為一毀腦脊髓的蟾除。否則須按上法再行搗

毀。

2.蟾除坐骨神經腓腸肌標本制備

（1）剝去一側下肢自大腿跟部起的全部皮膚，然后將標本俯臥位固定于蛙板上。

（2）在大腿背內側的股二頭肌與半膜肌之間，縱向分離坐骨神經至膝關節處，并在神經下

穿線備用。然后分離腓腸肌的跟腱，穿線結扎，并連同扎線將跟腱剪下，一直將腓腸肌分離

至膝關節。在膝關節旁釘一大頭針，折彎壓住膝關節，至此在體標本制備完成。

3.刺激及記錄裝置連接

4.實驗項目

（1）開始采樣，點擊“刺激”按鈕，系統開始工作，適當調整放大倍數，X、丫軸壓縮比，

使肌肉收縮產生的張力與刺激波形圖至最佳觀察形態。

（2）實時逐漸增大刺激強度，找出剛能引起肌肉出現微小收縮的刺激強度（閾強度）。繼續

增強刺激強度，觀察肌肉收縮反應是否也相應增大，即PcLab生物信號采集處理系統上記錄

的曲線是否相應增高。

（3）繼續增強刺激強度，直至肌肉收縮曲線不能繼續升高為止。找出剛能引起肌肉出現最

大收縮的最小的刺激強度，即最大刺激強度。

如采用自動閾強度測定方法，設定起始強度0V,結束強度2V,步長0.05V。

（4）用最大刺激強度的連續電脈沖刺激，使刺激頻率按1Hz,2Hz、5Hz、10Hz,15Hz、

20Hz、25Hz、30Hz逐漸增加（或刺激間隔逐漸減小），分別記錄不同頻率時的肌肉收縮

曲線，觀察不同頻率時的肌肉收縮變化。

如采用自動頻率方式，起始頻率1Hz,結束頻率30Hz,步長1Hz,刺激持續時間Is。

（5）文件存盤：按下“停止”按鈕，選中菜單欄“文件”主菜單欄下的“另存為”，將當前

波形曲線另外取文件名存至硬盤。

（6）觀察測量：按下快捷工具欄中的“觀察”快捷鍵，出現并移動十字光標，即顯示當前

位置參數，即可測量舒張期張力、收縮期張力、收縮期及舒張期時間，刺激強度、收縮期

dT/dto

（7）計算打印：在收縮波形的起止間拖動鼠標，選中圖形，點擊“處理窗”并打印。即可

完成全部實驗。

注意事項：

1.如果肌肉在未給刺激時即出現攣縮，是由于漏電等原因引起，需檢查電器接地是否良好。

2.做肌肉最大收縮時，刺激強度不宜太大，否則會損傷神經。

3.要將制備好的坐骨神經腓腸肌標本先放在任氏液中浸泡一段時間。

4.在肌肉收縮后，應讓肌肉休息一定時間再作下一次刺激，特別是在觀察刺激頻率的影響時。

5.實驗過程中保持換能器與標本連線的張力保持不變。

思考題：

1.實驗中觀察到的閾刺激是神經纖維的閾刺激，還是肌肉的閾刺激？如此測出的閾刺激的可

靠程度如何？有什么更好的方法？

2.為什么刺激強度增大肌肉收縮的幅度也增大？

3.不完全強直收縮與完全強直收縮是如何引起的？

4.為什么刺激頻率增高肌肉收縮的幅度也增大？

5.連續電刺激神經，為何容易發生肌肉疲勞的現象？

實驗三ABO血型鑒定

【實驗目的】學習血型鑒定，了解本人血型.

【實驗對象】指端末梢血

【實驗器材與試劑】采血針、玻片、滴管、1ml吸管、小試管、牙簽、試管架、標準A型血

清與標準B型血清、生理鹽水、75%酒精、碘酒、棉球、消毒棉簽。

【實驗內容與方法】

1.用75%酒精棉球消毒左手無名指及采血針，用消毒采血針刺破皮膚，滴1滴血于盛有1ml

生理鹽水的小試管中，制成紅細胞混懸液。

2.將標準抗A凝集素與抗B凝集素各1滴，滴在玻片兩側，分別標明。

3.用滴管吸取紅細胞混懸液分別滴一滴于玻片兩側血清上，用兩支牙簽分別混勻。

4.15分鐘后觀察玻片有無凝集現象。

注意事項：

1.紅細胞懸液不能太濃或太淡，否則可出現假陰性反應.

2.吸取凝集素和紅細胞混懸液時應使用不同的專用滴管.

3.抗A凝集素與抗B凝集素不能混合.

思考題：

血型相同為什麼還要作交叉配血實驗？

實驗四影響血液凝固的因素

【實驗目的】了解影響血液凝固的因素。

【實驗器材與試劑】

試管架、5ml注射器2副、小燒杯、秒表、冰塊、石蠟油、肝素、草酸鉀、木屑灰，干凈

小試管10支。

【實驗內容與方法】

1.準備5支干凈試管，分別放入草酸鉀、枸檬酸鹽、石蠟油、棉花及有冰塊的小燒杯中。

2.用干潔注射器取血，當血液進入空針時開始記時，抽血10ml,分別裝于以上5支準備好

的試管和一支不加任何物質的干潔試管中。每過30秒傾斜試管1次，觀察血液是否凝固，

直至血液不再流動為止，記錄血液凝固的時間。

注意事項：

1.加強分工合作，記時需及時準確.最好由一位同學負責將血液加入各試管，其他同學各掌握1

支試管，每隔半分鐘觀察1次.

2.手不可接觸試管底部.

3.試管、注射器及小燒杯必須清潔干燥。

思考題：

內源性凝血和外源性凝血的區別？

實驗五蛙心灌流

【實驗目的】

1.學習離體蛙心的灌流方法；

2.觀察灌流液中幾種離子濃度的改變，相應受體的激動劑和阻斷劑對心臟收縮活動的影

響。

【實驗所需儀器設備】

蛙手術器械一套，蛙心夾，蛙心灌流套管，鐵支架，蛙板，滴管，絲線，蛙板，兩個

燒杯，張力換能器，生物機能實驗系統BL420-E；任氏液，0.65%NaCl,1%KC1,l%CaCl2,

0.01%腎上腺素,0.01%乙酰膽堿,3%乳酸,阿托品o.5mg/ml,2.5%NaHC03

【實驗內容】

1.實驗準備操作

（1）對蛙行雙刺毀，仰臥固定于蛙板上，用鐵剪刀剪去胸壁，再用眼科剪小心地剪開心

包膜，暴露心臟，識別心臟動脈球、靜脈竇（背面）等結構（圖5-9—1A、B、0?用蛙心夾夾

住蛙心尖部，蛙心夾用線固定在蛙板上，松緊以動脈、心房、心室拉直呈水平位為合適。于

主動脈分支下預埋一條棉線做一虛結備用。把主動脈左支上端結扎，在近動脈球處剪一向心

斜切口（注意要剪破血管內膜，每次心縮時有血白切口涌出，但不要把血管剪斷。剪口位置

視套管尖端長度與心臟大小而定），左手用眼科鎰提起切口緣，右手將注有任氏液的斯氏套

管插入動脈干內，然后走手持左側血管分支上的結扎線向外拉,右手將蛙心套管送入動脈球;

把蛙心夾上的連線從固定物上取下，提起心尖，使心室與動脈球約呈100°-200°的鈍角，

然后當心室縮緊時把套管平直往心室方向推進。當感覺套管進入心室后再把心尖放平，隨即

將套管稍向心室推進，調整合適位置，可見套管內液面隨心跳而升降。即將已作虛結之絲線

把血管和套管固定起來，余線則扎于套管的玻璃小鉤上，以免心臟滑脫。提起套管，剪斷與

心臟相連的血管和組織（注意勿損傷靜脈竇及兩心房），摘出心臟。用任氏液洗去心內外的余

血后，注入新鮮任氏液備用。可在套管的下1/3處結一線作為標志，每次換任氏液時使液面

與此線相平。

（2）接好生物信號處理系統和機械一電換能器（圖5-9-2）選用適當參數，待記錄。

2.實驗項目

（1）描記正常心跳曲線并分析其疏密、規律性、幅度、頂點及基線的含義。

（2）離子的影響：套換入0.65%NaCl；任氏液中加入1-2滴l%CaC2混勻;加1-2滴1%KC1

于新換的管內全部任氏液中，混勻。觀察各自的效應。

（3）酸堿的影響：力n2.5%NaHC0J滴，混勻；加3%乳酸1滴，待效應明顯后，再加1

滴2.5%NaHCO”觀察曲線的變化。

(4)遞質的作用：加0.01%腎上腺素1-2滴，混勻；加0.01%乙酰膽堿1滴，混勻。

注意事項：

1.制備標本時，應按指導試探著插管，盡量避免損傷心臟(包括靜脈竇)。

2.勿混用滴加試劑的試管；加試劑應由少到多，作用不明顯再補加；加后立即用滴管攪勻，

使之迅速發揮作用；出現明顯效應后，應立即吸出全部灌流液，并以新鮮任氏液換洗，直至

恢復正常。

3.隨時滴加任氏液于心臟表面，使之保持濕潤狀態。

4.固定換能器時應稍向下傾斜，以免自心臟滴下的水流入換能器內造成短路。

思考題：

1.保證記錄連續，及時在曲線上加以注釋，分析各現象產生分原因。

2.分析有的蛙心標本套管內液面升降不明顯的原因并提出相應的對策。

3.實驗過程中套管內液面為什么每次都應保持一定的高度？

4.高Ca/任氏液與腎上腺素引起的心臟活動變化有何不同？為什么？

實驗六呼吸運動調節

【實驗目的】

本實驗學習描記哺乳動物呼吸運動的方法;觀察某些因素對呼吸運動的影響。

【實驗所需儀器設備】

哺乳動物手術器械一套、兔手術臺、氣管套管、注射器(20ml、5ml各一副)、50cm

長的橡皮管一條、機械換能器、20%烏拉坦、3%乳酸、生理鹽水、紗布、棉線。

【實驗內容】

1.麻醉與固定：兔稱重后，由耳緣靜脈注射20%烏拉坦溶液(5ml/kg),待麻醉后，固定

于兔臺上。

2.手術：剪去頸部的兔毛，于頸部正中切開皮膚，切口長約5-7cm,用止血鉗鈍性分離

皮下軟組織，暴露氣管，在喉下將氣管和食道分開，然后在氣管上做“倒T"型切口，插

入丫型氣管套管，用棉線結扎固定。在兩側頸總動脈旁分離出迷走神經，在其下方穿線

備用.最后用熱生理鹽水紗布覆蓋手術野。

3.膈肌運動描記：在箭突下方沿腹白線做一長約4cm切口，將箭突表面組織剝離，用有

齒鏡夾住箭突軟骨的邊緣，將其提起，可見箭突內側附著的膈肌條，于膈肌條的遠端穿

一長線將其結扎，剪斷箭突軟骨將其游離。然后將結扎線與機械換能器相連，由生理記

錄儀描記呼吸運動曲線。

注意事項：

1.作氣管插管時，插管前應注意對氣管剪口處進行止血,并將氣管內清理干凈，再行插管.

2.分離膈肌條時,應避免氣胸.

思考題：

用長管呼吸時，呼吸運動有何變化？為什么？

實驗七動脈血壓的神經體液調節

【實驗目的】學習哺乳動物動脈血壓的直接測量方法，以動脈血壓為指標，觀察在整體情況。

【實驗器材與試劑】

哺乳動物手術器械一套、BL—420生物機能實驗系統（二道生理記錄儀）、血壓換能器、

動脈插管、動脈夾、鐵支架、三通管、兔手術臺、照明燈、注射器（1ml、2ml、20ml）有色

絲線、紗布、棉球、20%氨基甲酸乙酯、0.5%肝素生理鹽水、1：10000去甲腎上腺素、1：

10000甲腎上腺素、生理鹽水等。

【實驗內容與方法】

1.麻醉與固定：兔稱重后，由耳緣靜脈注射20%烏拉坦溶液（5ml/kg）,待麻醉后，固定于兔

臺上。

2.手術：剪去頸部的兔毛，于頸部正中切開皮膚，切口長約5-7cm,用止血鉗鈍性分離

皮下軟組織，暴露氣管，在喉下將氣管和食道分開，然后在氣管上做“倒T”型切口，插入丫

型氣管套管，用棉線結扎固定。在兩側頸總動脈旁分離出迷走神經，在其下方穿線備用。最

后用熱生理鹽水紗布覆蓋手術野。

3.動脈插管：在左頸總動脈的近心端夾一動脈夾，結扎遠心端。用眼科剪刀在近結扎處

剪一斜口，向心方向插入已充滿抗凝劑的動脈插管，注意應保持插管與動脈方向的一致。用

線將插管與動脈扎緊。放開動脈夾，記錄血壓。

4.觀察項目：

①正常血壓曲線：記錄一段正常血壓曲線作為對照。

②用動脈夾夾閉右側頸總動脈15s：觀察血壓及心率的變化。

③牽拉頸總動脈:手持左側頸總動脈遠心端的結扎線，向心臟方向有節奏的往復牽拉5次/s,

持續5?10s,觀察血壓及心率的變化。

④靜脈注射去甲腎上腺素：由耳緣靜脈注射1：10000去甲腎上腺素0.2?0.3ml,觀察血壓

及心率的變化。

⑤靜脈注射腎上腺素：由耳緣靜脈注射1：10000腎上腺素0.2?0.3ml,觀察血壓及心率的

變化。

⑥電刺激減壓神經:用兩條線在該條神經中段分別作結扎,在兩條結扎線之間剪斷減壓神經,

分別用電刺激中樞端和外周端，觀察血壓及心率的變化。

⑦電刺激迷走神經：結扎右迷走神經，在結扎處頭側端剪斷神經，用電刺激迷走神經外周端,

觀察血壓及心率的變化。

注意事項：

1.本實驗麻醉應適量。

2.不要過度牽拉而損傷神經。

3.動脈插管應始終保持與動脈的方向一致。

4.每次注射藥物后，應立即用一注射器注射生理鹽水0.5ml以防止藥液殘留在針頭內。

5.每次實驗后，應等血壓基本恢復并穩定后，再進行下一項實驗。

思考題：

試述減壓神經在血壓調節中的作用。

實驗八消化道平滑肌生理特性

【實驗目的】觀察離體家兔回腸平滑肌的一般生理特性，分析不同藥物對哺乳動物消化道平

滑肌的作用及其機理。

【實驗方法與步驟】

1.標本制作用木錘猛擊家兔頭的枕部使其昏迷后,迅即剖開腹腔，找到回盲部，在離其2?

3cm處剪取長20?30cm的回腸一段，置于通氧的37c左右的臺氏液內輕輕漂洗；待腸腔

內容物基本洗凈后，將其分成數段，每段長約2cm,置上述洛氏液中備用.

2.實驗裝置于實驗前檢查并調試以及儀器連接，張力換能器連接于生物機能系統。藥浴槽

內盛入臺氏液，并恒溫于37℃,標記液面高度。取上述備用回腸一段，兩端均用縫針穿線，

其一端連線固定于S形鉤上，然后迅速移置于藥浴槽中，將另一端連線系于張力換能器上

并保持連線處于垂直位置和適宜的松緊度（切忌用力牽拉張力換能器），并使腸段保持約1g

后負荷的張力。向藥浴槽緩慢通氣，（每秒鐘1?2個小氣泡，通氧速度過快會影響腸的活

動），以提高臺氏液的含氧量。

3.運行生物信號處理系統選擇《消化道平滑肌生理特性》，單擊“確定”。

4.觀察溫度對腸平滑肌運動的影響

（1）將藥浴槽內臺氏液溫度維持在37℃,觀察并記錄正常腸段運動，作對照。

（2）用25℃的臺氏液更換浴槽內37℃臺氏液，觀察并記錄腸段運動的變化。

5.觀察藥物作用對腸平滑肌運動的影響：

每次給藥前先記錄正常腸張力變化曲線，記錄藥物作用明顯時的腸張力變化，然后用臺

氏液洗滌二次（下稱換液），待前面一個藥物作用完全消失后，再給下一個藥物。每一步操

作均在程序中作好標記。給藥順序如下：

（1）加入1:1萬腎上腺素0.2ml于藥浴槽中，待作用充分發揮后，取37℃的新鮮臺

氏生理溶液洗二次。待腸張力恢復正常后加入1:1萬去甲腎上腺素0.2ml,觀察并記錄反

應。換液。

（2）加入1:1萬乙酰膽堿0.2ml于藥浴槽中，待作用達最高峰時，立即加入1:1000阿

托品溶液0.2ml,觀察并記錄反應。

【實驗器材與試劑】家兔小腸、臺氏液，腎上腺素，去甲腎上腺素，乙酰膽堿，阿托品；恒

溫平滑肌槽，張力換能器，微調夾，鐵支架，雙凹夾，延伸棒，鱷魚夾，S型鉤，BL-420

生物機能系統，手術線，手術縫針，持針鉗，量筒，燒杯