hSTINGCTD蛋白的原核表達與純化）摘要：免疫干擾素中的基因接頭刺激免疫蛋白(stimulatorofinterferongene,STING)是一種介于誘導胞內基因DNA，并誘導固有細胞免疫病毒應答的重要基因接頭刺激蛋白,在人類機體在對抗免疫病毒后的免疫代謝反應中起關鍵性作用。具體而言就是宿主細胞通過模式識別受體識別入侵病原體的DNA，將信號傳遞給STING，導致TANK連接激酶1和干擾素調控因子3磷酸化，從而促進Ⅰ型IFN的上調表達，進而抑制病毒復制。為進一步研究該蛋白，本研究根據已報道STING蛋白的CTD結構域,設計并根據大腸桿菌密碼子偏好性優化后人工合成相應的核酸序列，將其插入至pET-21b質粒中，構建原核表達載體pET-21b-SUMO-hSTINGCTD-cut3質粒，并轉入BL21(DE3)細胞。將經IPTG誘導后菌液進行SDS電泳鑒定，經過誘導條件的優化，結果顯示，在35kD處有一條明顯的蛋白條帶。研究結果表明,STING的截斷蛋白得到了高效表達，為該蛋白功能的研究奠定了基礎。關鍵詞：干擾素基因刺激蛋白(stimulatorofinterferongene，STING)；CTD結構域；IPTG；原核表達；誘導hSTINGCTDProkaryoticExpressionandPurificationofProteinSummary:Interferongenestimulatingprotein(stimulatorofinterferongene,STING)isanimportantconnectorproteinthatmediatesintracellularDNAtoinduceinnateimmuneresponseandplaysakeyroleinantiviralimmuneresponse.Specifically,hostcellsrecognizeinvadingpathogensthroughpatternrecognitionreceptorsDNA,transmitsignalstoSTING,leadingtophosphorylationofTANKjunctionkinase1andinterferonregulatoryfactor3,thuspromotingup-regulationoftypeIIFNandinhibitingvirusreplication.Tofurtherstudytheprotein,accordingtotheCTDdomainofthereportedSTINGprotein,thecorrespondingnucleicacidsequencewasdesignedandsynthesizedaccordingtothecodonpreferenceofEscherichiacoli,insertedintothepET-21bplasmid,andthepET-21b-SUMO-ofprokaryoticexpressionvectorwasconstructedpET-21b-SUMO-hSTINGCTDplasmidsandtransfertoBL21(DE3)cells.TheIPTGinducedbacterialsolutionwasidentifiedbySDSelectrophoresisandtheinductionconditionswereoptimized.Theresultsshowedthattherewasanobviousproteinbandat35kD.Accordingtotheresults,thetruncatedproteinofSTINGwasexpressedefficiently,whichlaidafoundationforthestudyofitsfunction.Keywords:Interferongenestimulatingprotein(Stimulatorofinterferongene,STING);CTDdomain;IPTG;Prokaryoticexpression;Induction引言：干擾素基因刺激蛋白（STING）是一種跨膜蛋白，通常在152-173位區域（dimerizationdomain，DD），分子交接后會形成一個二聚體并始終處于自我發生抑制運動狀態。通過抑制交接合成反應可以形成兩個新的二聚體并同時作用處于自我抑制合成或者抑制交接反應中的狀態。當然它也會直接受到部分配體(比如說CDN)的變化，并且對它影響很大。受到刺激后，激活后的每個肽和STING多肽分子通過二聚體多肽激酶一都能夠將每個存在細胞質中的分子和其中的每個肽和TANK分子進行結合并形成二聚肽激酶1（TANK-bindingkinase1，TBK1），介導TBK1對IRF3的磷酸化分子刺激后會使分子核的構型發生變化并被分子激活,招募進入細胞質過程中的TANK分子結合酶刺激酶1(TANK-bindingkinase1,TBK1)，激活后的每個肽和STING多肽分子通過二聚體多肽激酶一都能夠將每個存在細胞質中的分子和其中的每個肽和TANK分子進行結合并形成二聚肽激酶1,介導出了TBK1對于GIRF3的磷酸化，導致干擾素（interferon，IFN）-β和其它多種細胞素（cytokines）的形成。IFNβ的產生是STING活化的標志。而腫瘤微環境（TME）天然免疫的信號傳導是腫瘤特異性T細胞的激活和腫瘤浸潤性淋巴細胞（TIL）浸潤的關鍵步驟。其中I型IFN對腫瘤激活的T細胞活化起著關鍵作用。這樣，STING不僅可以誘導Ⅰ型干擾素基因的表達，在天然免疫系統信號進行通路中起著非常重要影響作用；STING激動劑能激活主要包括樹突狀細胞等免疫刺激導致細胞，改變中國腫瘤微環境并誘導了腫瘤組織特異性T細胞的產生。天然免疫系統是人體抵抗病原入侵的第一道防線，來源于DNA病毒、細菌以及自身損傷細胞的DNA能夠被胞質內的DNA-sensingreceptor識別，激活宿主產生炎癥反應以及誘導產生Ⅰ型干擾素和其它免疫因子。目前已發現的DNA-sensingreceptor主要有TLR9、AIM2、cGAS等三個蛋白，其中TLR9定位在內體小泡（endosomal）膜上并主要負責探測胞外的游離DNA，AIM2、cGAS則定位在細胞質中并探測胞內的DNA。在上述三個DNA-sensingreceptorc中，cGAS的功能最為重要。cGAS在識別雙鏈DNA之后可以激活下游STING（stimulatorofinterferongenes）蛋白，激活的STING構象發生改變并進一步激活下游的TBK1以及轉錄因子IRF3，誘導產生Ⅰ型干擾素。小分子化合物2'3'-cGAMP是連接cGAS與STING的第二信使。2013年，德州大學西南醫學中心的ZhijianJChen教授研究團隊通過對不同類型DNA轉染細胞的胞漿提取物進行研究后，發現cGAS在DNA作用下能夠催化合成內源性分子2'3'-cGAMP，而2'3'-cGAMP可以與STING蛋白直接結合并通過二聚體構象的改變來激活STING蛋白。STING蛋白是Ⅰ型IFN生成過程中的中心蛋白，它主要在免疫相關的胸腺、心、脾、胎盤、肺及外周血白細胞等組織細胞中高表達，在細胞中通常以二聚體的形式存在。聚合后的STING蛋白處于非激活狀態，當受到諸如cGAMP、cdi-GMP等環狀核苷酸分子的刺激后由于構型發生變化而被激活。激活后的STING二聚體能招募TBK1蛋白至自身CTD結構域上，并介導TBK1對IRF3的磷酸化過程。靜息狀態下的STING蛋白主要定位于內質網上，激動狀態下的STING蛋白將伴隨著招募來的TBK、IRF3等一起滑向靠近細胞核的滑面內質網部位。被磷酸化修飾的IRF3在此過程中發生聚合形成二聚體，并向核內轉移進而促進IFN的轉錄。除了IRF3外，STING蛋白還能通過NF-κB途徑促進下游TNF、IL-6等免疫因子的合成。STING堪稱“中國蛋白”之一，是于2008年至2009年間由世界上好幾個科研小組（包括北京大學的蔣爭凡教授研究組，稱其為ERIS；以及武漢大學舒紅兵院士研究組，稱其為MITA）幾乎同時發現的在先天免疫通路中起重要聯接及感應功能的接頭蛋白。STING是一個多次跨膜蛋白，進一步的研究表明，它可以直接感受和結合一類細菌特異的第二信使信號分子，如c-di-GMP，介導下游信號通路的激活，這反過來產生細胞因子和其他先天免疫反應，這是固有免疫中的一個全新概念。通過結構分析，我們發現先前預測的在不同物種中非常保守的第五個跨膜區實際上處于胞內，并且這個區域對于STING形成同源二聚化介導生物學功能至關重要，這個結果與蔣爭凡研究組以前的發現非常吻合；結合與c-di-GMP復合物的結構分析，蘇曉東研究組提出，STING具有一個“蓋子”（lid）區域，在沒有結合c-di-GMP前，這個區域具有較高柔性，易于敞開；一旦感應及結合c-di-GMP后，這個“蓋子”區域就會與其它部分一起形成更加穩定的結構，非常牢固的結合c-di-GMP，復合物也進一步穩定了同源二聚體結構。STING是DNA信號通路的重要接頭蛋白。早期利用細菌信號分子環二鳥苷酸(cyclicdiguan-ylate,c-di-GMP)刺激巨噬細胞的研究發現，STING能通過其CTD直接結合c-di-GMP，2個STING可以結合1個c-di-GMP分子，因此推測STING可能是一個胞內的細菌識別分子。但競爭抑制實驗結果顯示，STING不能結合胞內其他形式的DNA和RNA，表明STING可能只是體內環二核苷酸的特異性識別分子。之后越來越多的研究表明，STING上游存在識別核酸的感受器，而STING作為接頭蛋白，在信號轉導的過程中發揮重要作用。有研究發現，多種DNA的感受器都有可能依賴STING而發揮作用，包括DAI、RNA聚合酶Ⅲ、DDX41、DNA-PK、MRE11、SOX2及IFI16等。作為固有免疫應答中的接頭蛋白，STING在介導Ⅰ型IFN中的重要性已基本得到確認。越來越多的臨床研究成果表明,STING細胞信號抑制通路在人體調控多種DNA病毒的免疫復制中可以發揮重要抑制作用,包括腺病毒、牛痘細胞病毒和多種乳頭狀腫瘤細胞病毒。STING這個信號連接通路也在防止逆轉錄病毒HIV的感染時可以發揮作用。有一項研究結果表明,反轉錄病毒中的RNA－DNA雜合體細胞可以同時激活一個STING分子通路,這可以說明廣泛的脫氧核酸分子結構均衡體具備同時激活一個STING的通路能力。綜上所述，通過對STING及其與c-di-GMP復合物結構的解析，非常清楚地展示了STING感受和結合c-di-GMP的分子機制，為進一步的免疫治療及c-di-GMP作為疫苗佐劑的開發應用提供了非常重要的線索。1.材料與方法1.1實驗地點、時間本實驗于2021年1月10日至2021年4月8日期間，歷時3個月，在河南農業大學龍子湖校區第一實驗樓412實驗室完成。1.2實驗材料1.2.1菌種、質粒、細胞、試劑本次實驗使用的E.coliTOP10、E.coliBL21(DE3)感受態細胞、插入融合標簽目的基因表達載體pET21b-His6-SUMO均為本實驗室保存。SanPrep柱式DNA膠回收試劑盒、SanPrep柱式PCR產物純化試劑盒、SanPrep柱式小提DNA質粒試劑盒均購自生工生物工程（上海）股份有限公司。DNA分子質量標準MarkerDL2000、DL5000購自TaKaRa公司。2×SDS上樣緩沖液購自河南鄭州鼎國生物科技有限公司；異丙基硫代半乳糖苷(IPTG)購自北京索萊寶科技有限公司。YeastExtract酵母粉、Tryptone蛋白胨粉購自ThermoFisherScientificInc。PremixTaq?購自TakaraBioInc。Ni-NTAAgarose(Qiagen)購自河南天馳生物科技有限公司。1.3主要儀器設備臺式恒溫離心機（Eppendorf）；溫度梯度PCR儀（Eppendorf）；電泳儀、電泳槽（北京君意東方電泳設備有限公司）；超純水系統（申貝科學儀器（蘇州）有限公司）；高壓蒸汽滅菌鍋（SANYOElectricCo.,Ltd.）。1.4實驗方法1.4.1pET-21b-SUMO-hSTINGCTD-cut3表達質粒的合成pET-21b-SUMO-hSTINGCTD-cut3質粒由金唯智生物科技有限公司（蘇州）進行合成構建，宿主菌為E.coliDH5α。1.4.2hSTINGCTD-cut3蛋白誘導表達——IPTG濃度條件優化將pET-21b-SUMO-hSTINGCTD-cut3分別被轉化入E.coliBL21(DE3)感受態細胞中，將其菌液涂布在濃度為100μg/mL氨芐抗性LB固體培養基上后放置于溫度37℃的恒溫培養箱中進行12~16小時的培養。將濃度為100μg/mL氨芐抗性固體培養基上長出的菌落接種到10mL含有濃度為100μg/mL氨芐抗性的LB液體培養基中，并放置于37℃的恒溫培養箱中進行12~16小時的培養。之后，以1:100的比例將菌液接種到加有100μg/mLAmp濃度的100mLLB培養基中進行37℃，轉速為220r/min的振蕩培養，并時刻進行取樣并測量菌液的OD值，當菌液擴增至對數生長中期時，即菌液OD600到達0.6~0.8之間時，停止振蕩培養，并添加IPTG誘導劑以誘導目標蛋白的表達。并試驗在以添加不同濃度的IPTG誘導劑，不同誘導溫度，不同誘導時間三種變量條件之間進行優化組合，并得出結論在添加0.5mmol/LIPTG誘導劑，誘導溫度為18℃，轉速為140r/min，誘導時間為12小時的條件下誘導表達的效率最高，同時取誘導前菌液1mL作為誘導前對照組，并將菌液以4℃，8000rpm，10min離心后棄上清，加入100μLPBS緩沖液重懸混勻，后加入等體積的2×SDS上樣緩沖液（SDSSampleLoadingBuffer）并振蕩離心混合均勻，后置于孵育器上，設置孵育溫度99℃，10min變性。誘導結束之后，取1mL菌液到EP管中作為誘導后對照組，在4℃離心以8000rpm，10min離心后棄上清，并加100μLPBS緩沖液重懸混合均勻，之后加同體積2×SDS上樣緩沖液并振蕩離心混合均勻，后置于孵育器上，設置孵育溫度99℃，10min變性。對剩余菌液進行溫度為4℃，轉速為8000rpm離心10min，后棄掉上清，加入10mLBindingBuffer重懸，充分混勻后與冰上在功率設置為20%，工作頻率設置為工作5s間隔10s，120次超聲波的超聲波細胞破碎機中進行超聲細胞破碎，破碎完成后可以觀察到菌液由渾濁變澄清透明即表明該蛋白的可溶性較好。破碎后使用低溫離心機進行4℃，12000rpm，30min離心，之后收集破碎后蛋白上清和沉淀，各取20μL加入提前加好20μL2×SDS上樣緩沖液的1.5mL離心管中，之后放入孵育器中設置溫度99℃，10min進行高溫孵育讓蛋白質變性，之后進行SDS凝膠電泳，以分析表達效率。1.4.3SDS凝膠電泳（1）常規試劑的配制1.30%聚丙烯酰胺貯液：丙烯酰胺150g，甲叉雙丙烯酰胺4g，雙蒸水500ml，濾紙過濾后，棕色瓶避光4℃保存；2.1.5mol/L，pH8.8Tris-HCl分離膠緩沖液：18.15gTris，用1mol/LHCl定容至100ml，棕色瓶避光4℃保存；3.1.0mol/L，pH6.8Tris-HCl分離膠緩沖液：12gTris，用1mol/L調pH至100ml，棕色瓶避光4℃保存；4.10%SDS溶液：10gSDS加水定容至100ml，完全溶解室溫保存；5.10%AP溶液：0.1gAP（過硫酸銨）加水定容至1ml，用前新鮮配制；6.1×SDS電泳緩沖液：25mMTris（3.0285g/L），192mM甘氨酸（14.41g/L），0.1%SDS（1g/L），pH8.30；7.染色液：0.25g考馬斯亮藍R-250溶解于45ml甲醇，45ml水，10ml冰醋酸，過濾除去雜質；8.脫色液：45ml甲醇，45ml水，10ml冰醋酸；9.固定液：50ml甲醇，40ml水，10ml冰醋酸；10.2×SDS上樣緩沖液：10%SDS0.4ml，0.375MTris-HCl（pH6.8）0.333ml，甘油0.2ml，1%溴酚蘭10μL，β-疏基乙醇100μL，加水定容至1ml，分裝后-20℃保存。（2）樣品的處理1.蛋白含量較低的酶制劑或原料樣品①粉劑（或顆粒）樣品稱取樣品1g，加入3-5ml蒸餾水進行攪拌溶解1h（攪拌時間可根據實際情況進行增減），4000rpm離心10min，取離心上清液等體積加入20%的三氯乙酸聚沉30min，離心，棄去離心上清液，用70%的丙酮溶液洗滌沉淀，4000rpm離心10min，重復洗滌3-5次，將丙酮洗滌液吹干，加入適量（1-3ml）PBS溶解沉淀，溶解液即可用于電泳實驗。②液體樣品液體樣品經離心后，取離心上清液等體積加入20%的三氯乙酸聚沉30min，離心，棄去離心上清液，用70%的丙酮溶液洗滌沉淀，4000rpm離心10min，重復洗滌3-5次，將丙酮洗滌液吹干，加入適量（1-3ml）PBS溶解沉淀，溶解液即可用于電泳實驗。2.蛋白含量相對較高的酶制劑或原料樣品①粉劑（或顆粒）樣品稱取樣品1g，加入3-5ml蒸餾水進行攪拌溶解1h（攪拌時間可根據實際情況進行增減），4000rpm離心10min，取離心上清液用于電泳實驗。②液體樣品液體樣品經離心后，取離心上清液用于電泳實驗。3.未知樣品對未知樣品可以進行分析歸類（是否為酶制劑，是哪一類酶），根據已知電泳圖譜研究確定該類物質能跑出清晰電泳條帶的蛋白濃度影響范圍，在對未知樣品數據進行電泳實驗前，測定其蛋白含量，根據其結果然后進行選擇適當提高處理。（3）凝膠的配制1..設備檢漏應將安裝電泳板和玻璃板配件按規定順序地安裝好并擰緊固定,在安裝電泳板與玻璃板間隙處注滿少量蒸餾水,靜置15-20min,觀察是否有液體浸透而出,若無則進行下一步操作,反之,則需要拆除零件進行一次重新安裝,并進行重復多次檢漏至已無任何液體浸透而出。注意：如果樣品數量較少，一個膠板就足夠了，此時應在另一面使用膠片分離器，以防止涂膠時出現短路。2.分離膠的制備根據目的蛋白的分子量大小選擇合適的凝膠濃度，不同濃度的SDS分離膠的最佳分離范圍如下表蛋白質分子量范圍（KD）適宜的凝膠濃度（％）＞100830～1001010～3012＜1015將檢漏的蒸餾水倒出，按下表進行SDS分離膠的配制（使用凝膠試劑盒）電泳凝膠濃度試劑8％10％12％15％H2O（ml）4.634.03.32.330％Acr－Bis（29：1）（ml）2.673.34.05.01.5mol／LTris.cl（pH8.8）（ml）2.510％SDS（ml）0.110％AP（ml）0.1TEMED（μl）4444總體積（ml）10注：如室溫高于30℃，可適量減少TEMED30-50%，防止膠過快凝結；如室溫低于20℃，可適量增加TEMED30-50%，防止膠過慢凝結。常用的分離膠濃度為10%。根據以上表格準備，所有試劑進入燒杯，充分混合，快速注射，注射過程要平穩，避免氣泡的產生，注膠后用蒸餾水水封(水封的目的是使分離膠變平，消除氣泡，防止氧化)，按照上表步驟進行材料配制,所有注膠試劑均勻加入到燒杯中,充分攪拌混勻后,迅速開始進行材料注膠,注膠操作過程要平穩,避免產生較大氣泡,注膠過程完成后用少量蒸餾水迅速進行水封(這種水封的設計目的主要是為了使分離膠變平,并排除任何氣泡,且可以防止氧化),凝膠聚合好的重要標志也就是在凝膠與水層之間可以形成清晰的界面3.濃縮膠的制備分離膠制備完成后，靜置60-90min，確保分離膠凝結完全后，倒出水封液體并用濾紙把剩余的水分吸干，按下表進行SDS濃縮膠的配制。試劑濃度（％）H2O（ml）4230％Acr－Bis（29：1）（ml）10.51.0mol／LTris.cl（pH8.8）（ml）10.510％SDS（μl）804010％AP（μl）6030TEMED（μl）84總體積（ml）63所有試劑加入燒杯中，充分混勻后，連續平穩加入濃縮膠至離邊緣5mm處，迅速插入樣梳（樣梳需一次平穩插入，梳口處不得有氣泡，梳底需水平），靜置40-60min。4.制樣吸取經預處理后樣品25μl與25μl上樣緩沖液混合均勻后，于沸水煮3-5min去掉亞穩態聚合，冷卻后4000rpm離心4min。5.上樣濃縮后的膠液凝結后,向上加樣槽內每孔倒入適量電泳緩沖液,拔出樣梳(要使帶有鋸齒孔內的氣泡全部隨樣排出,否則會嚴重影響加樣時的效果),向每孔內加樣10μl（加樣時移液槍要始終保持豎直，且加樣迅速，為避免出現邊緣效應，最好方法選取中部孔注樣）。6.跑膠加樣完成后，在電泳槽內加入適量電泳緩沖液，連接好冷凝水，接通電源，進行電泳，穩壓90V，電泳90min左右，進入分離膠后，電壓改為120V，待溴酚藍距凝膠邊緣約5mm時，停止電泳。7.凝膠板剝離與固定電泳結束后，取開玻璃板，將凝膠板做好標記后放在大培養皿內（剝膠時要小心，將凝膠保持完好），用蒸餾水小心清洗1-3次，加入固定液進行固定40-60min，倒出固定液，蒸餾水清洗3-5次。8.染色固定清洗結束后，倒入染色液，染色40-60min。9.脫色染色結束后，蒸餾水清洗3-5次，倒入脫色液進行脫色，30-60min后更換1次脫色液后，脫色至蛋白條帶清晰即可。10.清洗電泳過程結束后,將用于電泳隔熱玻璃的模版及熱水燒杯仔細進行清洗,并用少量蒸餾水對其進行一次漂洗后,將進行電泳所用所有物品全部歸置原位。1.4.4表達產物的純化為了提高目標蛋白的純度，采用鎳離子親和柱對異源蛋白進行梯度洗脫。首先向柱中加配制好的氯化鎳，再加5倍體積的bindingbuffer平衡柱體后將上清加入到預處理過的Ni-NTA進行上樣，溫度保持在4℃，并在轉速160r/min的搖床上結合3小時。結合之后將柱中初濾液放入15mL管中留樣，隨后分別用10mL咪唑濃度為10，20，50，100，250，500mMElutionBuffer進行梯度洗脫并且分別用15mL的離心管取樣保存。取蛋白樣品各20μL加入20μL的SDS蛋白上樣緩沖液在孵育器中，99℃孵育10min。處理后的樣品使用配制好的10%濃度的SDS分離膠進行電泳。隨后我們使用超濾管對目的蛋白樣品重復數據進行分析多次超濾離心處理，以進一步發展提高自身蛋白純度要求以及洗去樣品中含有的咪唑。后將得到的目的蛋白保存在含有100mM，pH8.0Tris-HCl，10%蔗糖的保存液中，置于-70℃環境下長期貯存。2.結果與分析在對STING－CUT3進行IPTG誘導表達后蛋白進行SDS凝膠電泳的結果顯示，誘導后在51kDa處都有目的條帶出現，與理論大小相一致。圖1.STING－CUT3蛋白誘導劑濃度摸索樣品依次為：未誘導、0.1、0.3、0.6、0.9、1mmol／L圖2.STING－CUT3蛋白誘導劑溫度摸索樣品依次為：未誘導、16、18、20、25、37℃圖3.STING－CUT3蛋白誘導劑時間摸索樣品依次為：未誘導、6、8、10、12、20h3.討論STING蛋白在免疫系統中起著相當重要的作用，尤其是在監測和清除人體產生的癌細胞的功能中。沒有它的參與，這個功能就像無源之水，無根之木。如今，惡性腫瘤是醫學界努力攻克的堡壘之一，因此刺蛋白越來越受到科學家的關注和青睞。科學家們一直在尋找可以利用自身免疫系統對抗癌癥的新方法，并試圖回答這樣對于一個重要問題:我們能訓練免疫系統風險識別并標記癌細胞進而對它們之間進行環境破壞嗎？一種被稱為STING的蛋白引起了科學家們的興趣。當激活STING時，它會觸發身體釋放一部分能夠識別和破壞癌細胞的T細胞。但是如何將其激活呢？在一項題為“DesignofamidobenzimidazoleSTINGreceptoragonistswithsystemicactivity”的文章中，科學家描述了他們尋找新分子來激活STING的工作。該項研究的主要作者JoshiRamanjulu說：“這是一個困難的尋找過程。多年來，我們一直在研究STING，以進一步了解它是如何工作以及它在細胞中的作用。通過篩選多個分子文庫，我們發現了一系列有希望的活性分子，通過調整它們的性質，使它們成為更有效的STING蛋白激動劑。”這些分子是同類中的第一種，其作用不同于正在開發的其他一些STING激動劑。Joshi解釋說:“這些新分子的潛在優勢之一是，它們可以被注射到血液中，而不是直接注射到腫瘤中，這有可能達到難以觸及的實體腫瘤和從主要腫瘤中分離出來的癌細胞簇，從而擴大了患者的治療選擇。我們還在小鼠癌癥研究模型中看到，新分子激活了免疫分析系統的‘記憶’，也就是說，如果癌癥復發，免疫組織細胞就已經發展做好立刻攻擊準備，而無需提供更多治療。”STING蛋白是Ⅰ型IFN生成過程中的中心蛋白，它主要在免疫相關的胸腺、心、脾、胎盤、肺及外周血白細胞等組織細胞中高表達，在細胞中通常以二聚體的形式存在。聚合后的STING蛋白處于非激活狀態，當受到諸如cGAMP、cdi-GMP等環狀核苷酸分子的刺激后由于構型發生變化而被激活。激活后的STING二聚體能招募TBK1蛋白至自身CTD結構域上，并介導TBK1對IRF3的磷酸化過程。靜息狀態下的STING蛋白主要定位于內質網上，激動狀態下的STING蛋白將伴隨著招募來的TBK、IRF3等一起滑向靠近細胞核的滑面內質網部位。被磷酸化修飾的IRF3在此過程中發生聚合形成二聚體，并向核內轉移進而促進IFN的轉錄。近年來人們對cGAS-STING通路的認識不斷深刻。其對腫瘤的作用也從最初促進腫瘤免疫產生IFN-ⅰ，加深到增加癌細胞衰老表型的表達，促進其衰老和凋亡。其中最經典為cGAS-STING-TBK1-IRF3-Ⅰ型干擾素通路：STING可能誘導Ⅰ型IFN的產生并進一步激活抗腫瘤CD8+T細胞。目前，刺激性抗腫瘤藥物的開發已取得較大進展，已有多個藥物進入臨床研究。包括ImmuneSensorTherapeutics公司旗下的IMSA-101，葛蘭素史克旗下的GSK3745417，百時美施貴寶公司旗下的BMS-986301，SpringBankPharmaceuticals公司旗下的SB-11285，默沙東公司旗下的MK-1454。在適應癥方面，目前主要是針對實體瘤，但也已經開始向非實體瘤開發，例如MK-1454就針對淋巴瘤在進行開發。cGAS-STING信號通路作為細胞質內重要的免疫應答通路，是構成固有免疫的重要部分。cGAS作為一種模式識別受體，識別胞質內出現腫瘤細胞DNA，可通過cGAS-STING-TBK1-IRF3-IFN軸或STAT信號通路產生Ⅰ型IFN、產生炎性小體等方式參與腫瘤免疫，減小腫瘤體積。總而言之，STING信號通路是目前的研發明星分子，目前國內外介入STING激動劑研究的越來越多，得益于此，STING激動劑不斷涌現的、在各大疾病治療領域取得了很大的進展。特別是在腫瘤細胞免疫系統治療技術領域，吸引了包括默沙東、百時美施貴寶等諸多制藥企業巨頭的目光，多個藥物進入了一個臨床應用研究。另外,與腫瘤放療、化療、腫瘤疫苗、免疫檢查點抑制劑、CAR－T等干細胞免疫治療或者其他新型的腫瘤治療藥物方式可以聯合開發應用,不僅因為可以有效減少這些STING激動劑的合理用量和減少毒副作用,還可以通過不同免疫機制間的協同作用增強它的抗惡性腫瘤治療效果、克服其對腫瘤疫苗治療的藥物耐受性,取得最佳的腫瘤治療和療程和效果。相信未來隨著科學研究的不斷深入,進展速度會越來越快。參考文獻[1]熊思東.抗病毒感染的固有免疫機制[J].現代免疫學，2011，31(3)：179-180.[2]IshikawaH，BarberGN.STINGisanendoplasmicreticulumadaptorthatfacilitatesinnateimmunesignalling[J].Nature，2008，455(7213)：674-678.[3]ZhongB，YangY，LiS，etal.TheadaptorproteinMITAlinksvirus-sensingreceptorstoIRF3transcriptionfactoractivation[J].Immunity，2008，29(4)：538-550.[4]JinL，WatermanPM，JonscherKR，etal.MPYS，anovelmembranetetraspanner，isassociatedwithmajorhistocompatibilitycomplexclassⅡandmediatestransductionofapoptoticsignals[J].MolCellBiol，2008，28(16)：5014-5026.[5]SunW，LiY，ChenL，etal.ERIS，anendoplasmicreticulumIFNstimulator，activatesinnateimmunesignalingthroughdimerization[J].ProcNatlAcadSciUSA，2009，106(21)：8653-8658.[6]OuyangS，SongX，WangY，etal.StructuralanalysisoftheSTINGadaptorproteinrevealsahydrophobicdimerinterfaceandmodeofcyclicdi-GMPbinding[J].Immunity，2012，36(6)：1073-1086.[7]GaoP，AscanoM，ZillingerT，etal.Structure-functionanalysisofSTINGactivationbyc[G(2'，5')pA(3'，5')p]andtargetingbyantiviralDMXAA[J].Cell，2013，154(4)：748-762.[8]TanakaY，ChenZJ.STINGspecifiesIRF3phosphorylationbyTBK1inthecytosolicDNAsignalingpathway[J].SciSignal，2012，5(214)：ra20.[9]ZhongB，ZhangL，LeiC，etal.TheubiquitinligaseRNF5regulatesantiviralresponsesbymediatingdegradationoftheadaptorproteinMITA[J].Immunity，2009，30(3)：397-407.[10]BhatN，FitzgeraldKA.RecognitionofcytosolicDNAbycGASandotherSTING-dependentsensors：Highlights[J].EurJImmunol，2014，44(3)：634-640.[11]TsuchidaT，ZouJ，SaitohT，etal.TheubiquitinligaseTRIM56regulatesinnateimmuneresponsestointracellulardouble-strandedDNA[J].Immunity，2010，33(5)：765-776.[12]CuiH，LiuY，HuangY.RolesofTRIM32incornealepithelialcellsafterinfectionwithherpessimplexvirus[J].IntJExpCellPhysiolBiochemPharmacol，2017，43(2)：801-811.[13]SunL，WuJ，DuF，etal.CyclicGMP-AMPsynthaseisacytosolicDNAsensorthatactivatesthetypeⅠinterferonpathway[J].Science，2013，339(6121)：786-791.[14]ZhangX，ShiH，WuJ，etal.CyclicGMP-AMPcontainingmixedphosphodiesterlinkagesisanendogenoushigh-affinityligandforSTING[J].MolCell，2013，51(2)：226-235.[15]QiuH，FanY，JoyeeAG，etal.TypeⅠIFNsenhancesusceptibilitytochlamydiamuridarumlunginfectionbyenhancingapoptosisoflocalmacrophages[J].JImmunol，2008，181(3)：2092-2102.[16]BarkerJR，KoestlerBJ，CarpenterVK，etal.STING-dependentrecognitionofcyclicdi-AMPmediatestypeⅠinterferonresponsesduringchlamydiatrachomatisinfection[J].MBio，2013，4(3)：e00018-13.[17]KimS，LiL，MaligaZ，etal.Anticancerflavonoidsaremouse-selectiveSTINGagonists[J].ACSChemBiol，2013，8(7)：1396-1401.[18]ZhangH，HanMJ，TaoJ，etal.RatandhumanSTINGsprofilesimilarlytowardsanticancer/antiviralcompounds[J].SciRep，2015，5：18035.[19]CorralesL，GlickmanLH，McwhirterSM，etal.DirectactivationofSTINGinthetumormicroenvironmentleadstopotentandsystemictumorregressionandimmunity[J].CellRep，2015，11(7)：1018-1030.[20]KapustRB,TozserJ,TDCopeland,DSWaugh,etal.TheP1’specificityoftobaccoetchvirusprotease[J].BiochemicalandBiophysicalResearchCommunications,2002,294(5):949–955.[21]NallamsettyS,KapustRB,TozserJ,CherryS.Efficientsite-specificprocessingoffusionproteinsbytobaccoveinmottlingvirusproteaseinvivoandinvitro[J].ProteinExpressionandPurification,2004,38(1):108-115.[22]KapustRB,WaughDS.ControlledintracellularprocessingoffusionproteinsbyTEVprotease[J].ProteinExpressionandPurification,2000,19(2):312–8.[23]KapustRB,T?zsérJ,FoxJD,AndersonDE,CherryS,CopelandTD,WaughDS.Tobaccoetchvirusprotease:mechanismofautolysisandrationaldesignofstablemutantswithwild-typecatalyticproficiency[J].ProteinEngineering,DesignandSelection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