PCR實驗室標本管理、生物安全和防污染策略

PCR實驗室標本管理、生物安全和防污染策略

1標本采集時間對擴增檢測結果

的影響在疾病發展過程中，標本采集過早或過晚都可能會給出假陰性結果。

標本采集時間對擴增檢測結果

的影響2標本采集部位的準備標本采集部位的清潔消毒可去掉污染的微生物或其他雜物，但應適度，過度清潔消毒有可能會去掉或破壞靶微生物，故標本采集部位的準備應由訓練有素的人員進行。標本采集部位的準備標本采集部位的清潔消毒可去掉污染的微生3標本的類型和采集量標本的類型：血清（漿）、分泌物、痰、尿和腦脊液等。標本的采集量：應根據所測病原體而定。一般來說，如果標本的量對病原體培養夠用的話，則其量亦足以用于核酸提取及其后的擴增檢測對于定量檢測來說，對標本的收集要求更為精確。標本的類型和采集量標本的類型：血清（漿）、分泌物、痰、尿和腦4采集質量的評價血清（漿）標本：溶血、脂血等；分泌物、痰：評價評價內容包括細胞組成，所需類型細胞的數量和核酸總量。評價方法：包括肉眼觀察，顯微鏡下觀察和化學分析等。采集質量的評價血清（漿）標本：溶血、脂血等；5采樣及運輸容器標本的采集材料如棉簽應為一次性使用；運輸容器亦應為密閉的一次性裝置；采集所用的防腐劑、抗凝劑及相關試劑材料不應對核酸擴增及檢測過程造成干擾。采樣及運輸容器標本的采集材料如棉簽應為一次性使用；6標本采集中的防污染

采集中要特別注意污染，防止混入操作者的頭發、表皮細胞、痰液等；如使用玻璃器皿，必須經高溫滅菌，以使用可能存在的RNase失活。標本采集中的防污染7標本運送

樣本一經采集，則應盡可能快的送至檢測實驗室。

樣本中如加入適當的穩定劑，如用于RNA測定加入GITC的血清（漿）樣本和用于DNA測定的EDTA抗凝血等，則可在室溫下運送過郵寄。實驗室應根據待測靶核酸的特性，對各種臨床樣本的運送條件作出相應的規定。

標本運送樣本一經采集，則應盡可能快的送至檢8第一節臨床標本的處理和保存一、血清（漿）標本1.DNA標本DNA標本的獲取、處理和保存，可按照一本的血清標本處理程序即可。2.保存全血樣本用于DNA提取檢測，可4℃下短期保存如用于RNA檢測，則應在取血后盡快提取RNA。

第一節臨床標本的處理和保存9容器的使用容器的使用102.RNA標本處理和保存對于RNA測定，標本的獲取、處理和方式對測定結果有決定性影響。研究表明，用于RNA測定的血漿標本最好是使用EDTA抗凝（嚴禁使用肝素，因其對PCR擴增有幾只，且很難在核酸提取過程中完全去除），抗凝后6小時內分離血漿保存；如使用血清標本，則需盡快（2小時）分離血清后保存。保存時間短時（1-2周）可放-20℃下，較長期時應在-70℃下。

2.RNA標本處理和保存對于RNA測定，標本11二、全血標本以全血作為

待測標本時1.抗凝劑的選擇以全血作為待測標本時，一般使用EDTA-Na2或枸櫞酸鈉，不可使用肝素。2.保存全血樣本用于DNA提取檢測，可4℃下短期保存，如用于RNA檢測，則應在取血后盡快提取RNA。

二、全血標本以全血作為

待測標本時12三、外周血單個核細胞外周血單個核細胞可從抗凝全血制備，主要有兩條途徑，一是使用淋巴細胞分離液分離制備；二是使用紅細胞裂解液，裂解全血中的紅細胞，經生理鹽水數次洗滌，即可看到單個核細胞。保存外周血單個核細胞如暫不提取核酸，可保存于-70℃下。三、外周血單個核細胞外周血單個核細胞可從抗凝全血制備，主要有13四、痰特點痰屬于分泌物，痰標本中含有大量粘蛋白和雜質。處理1、如作結核桿菌DNA測定標本，提取核酸前，需對標本進行初步處理，即用1mmol/LNaOH液化。需注意的是，液化時不能加熱，液化時間不能過長。保存液化標本如不立即用于核酸提取，可保存于-70℃下。四、痰特點痰屬于分泌物，痰標本中含有大量粘蛋白和雜質。142、如用于非結核桿菌如肺炎支原體的PCR檢測，痰標本的處理只能室溫懸浮于生理鹽水中，充分震蕩混勻，促使大塊粘狀物下沉，取上清離心，所得到的沉淀物即可用于核酸提取。2、如用于非結核桿菌如肺炎支原體的PCR檢測，痰標本的處理只15五、棉拭子使用PCR方法檢測性疾病病原體時，臨床標本一般為棉拭子，可將棉拭子置于適量生理鹽水中，充分震蕩洗滌后，取上清立即離心，其后的沉淀即可用于DNA提取。保存如不立即用于核酸提取，則需保存于-70℃下。五、棉拭子使用PCR方法檢測性疾病病原體時，臨床標本一般為棉16六、膿液膿液的處理依情況而定。如用于分枝桿菌（如結核桿菌）核酸測定的標本，粘稠的膿液可采用痰標本的處理模式，先進行液化，再離心取沉淀提取DNA；水樣的膿液則直接離心，沉淀用于生理鹽水洗2-3次后，即可用于DNA提取。六、膿液17對于用于非分枝桿菌測定的膿液標本，如過于粘稠，則加入適量生理鹽水，充分振蕩后，靜置，取上清立即離心，沉淀用于DNA提??；如為水樣，則按上述直接離心取沉淀即可。保存沉淀標本的保存條件同樣為-70℃。PCR實驗室標本管理、生物安全和防污染策略課件18七、體液臨床體液標本包括胸水，腹水，腦脊液，尿液等，可按水樣標本的方式直接離心取沉淀提取核酸。沉淀樣本的保存同上。七、體液19八、組織組織分新鮮組織塊和石蠟切片。新鮮組織塊的處理步驟首先用生理鹽水洗兩次，然后將其搗碎或切碎，加入生理鹽水后劇烈震蕩混勻，離心，棄上清，再加蛋白酶K消化后提取核酸。保存新鮮組織最好是保存于50%乙醇中，具體作法是，先用生理鹽水將組織洗一次，切成寬度小于1cm的小片，加入適量的生理鹽水，然后，邊搖邊加入無水乙醇至濃度為50%，這樣固定的組織標本室溫下可保存數日，4℃可保存6年。八、組織組織分新鮮組織塊和石蠟切片。20保存新鮮組織最好是保存于50%乙醇中，具體作法是，先用生理鹽水將組織洗一次，切成寬度小于1cm的小片，加入適量的生理鹽水，然后，邊搖邊加入無水乙醇至濃度為50%，這樣固定的組織標本室溫下可保存數日，4℃可保存6年。石蠟切片用于核酸提取，需先用辛烷或二甲苯脫蠟，再用蛋白酶K消化后可進行DNA提取。保存新鮮組織最好是保存于50%乙醇中，具體作法是，先用生21小結1、標本的收集及適當的預處理，對用于PCR測定的核酸模板的成功提取，具有決定性作用。2、要著重強調的一點是，所有用于上述臨床標本收集的容器如試管或離心管，均應使用前高壓滅菌。小結1、標本的收集及適當的預處理，對用于PCR測定的核酸模板22PCR實驗室標本管理、生物安全和防污染策略課件23PCR污染與對策

PCR反映的最大特點是具有較大擴增能力與較高的靈敏性，但令人頭痛的問題是易污染，機器微量的污染即可造成假陽性的產生。實驗中設立的陰性對照可提示有無假陽性結果出現。如果一次試驗中的幾個陰性對照結果中出現一個或幾個陽性結果，提示本次試驗中其他標本的檢驗結果可能有假陽性。造成假陽性的原因包括樣品污染擴增試劑污染擴增產物交叉污染等常見的污染來源包括實驗室環境、加樣器、操作中形成的噴霧、DNA抽提、儀器、試劑及其他與擴增產物接觸的物品。PCR污染與對策

PCR反映的最大特點是具有較大擴增能力與較24PCR污染與對策

污染的原因來自其他測試樣品污染：標本污染主要有收集標本的容器被污染，或標本放置時，由于密封不嚴溢出容器外，或容器外貼有標本而造成相互間交叉污染；標本核酸模板在提取過程中，由于吸樣槍污染導致標本間污染;微生物可隨氣溶膠或形成氣溶膠而擴散，導致彼此間的污染。PCR污染與對策

污染的原因25PCR污染與對策

污染的原因

:來自實驗材料或者配制過程中，由于加樣槍、容器、雙蒸水及其它溶液被PCR核酸模板污染。

“遺留”污染。這是PCR反應中最常見的污染問題。因為PCR產物拷貝量大（一般為1013拷貝/ml），高于PCR檢測的拷貝極限，所以極微量的PCR產物污染，就可以造成假陽性。PCR污染與對策

污染的原因

:來自實驗材料或26PCR污染與對策

污染的原因:還有一種容易忽視，最可能造成PCR產物污染的形成是氣溶膠污染，在空氣中與液體面摩擦時就可形成氣溶膠，在操作是比較劇烈地搖動反應管，開蓋時、吸樣時及污染進樣槍的反復吸樣都可形成氣溶膠而污染。一個氣溶膠顆粒可含48000拷貝，因而由其造成的污染是一個值得特別重視的問題。

PCR污染與對策

污染的原因:還有一種容易忽視，最可能造成P27PCR污染與對策

防治污染的方法:

嚴格實驗室分區及其他實驗用品及吸樣槍應專用。實驗前實驗室應用紫外線消毒以破壞殘留的DNA或RNA.

吸樣槍：由于操作時不慎將樣品或模板核酸吸入槍內或黏在槍頭上，是一個嚴重的污染源，因而加樣或吸取模板核酸時要十分小心，吸樣要慢，吸樣時盡量一次性完成，忌多次抽吸，以免交叉污染或產生氣溶膠污染。PCR污染與對策

防治污染的方法:

28PCR污染與對策

防治污染的方法:

分裝PCR試劑：所有的PCR試劑都應小量分裝，PCR反應液應預先配置好，然后小量分裝，-20℃保存，以減少重復加樣次數，避免污染機會，另外，PCR試劑，PCR反應液應與樣品及PCR產物分開保存，不應放于同一冰箱。防止操作人員污染，使用一次性手套、吸頭、離心管應一次性使用PCR污染與對策

防治污染的方法:

29PCR污染與對策

防治污染的方法:

每次PCR實驗務必做陽性對照、陰性對照、陰性對照它包括①標本對照：被檢的標本是血清就用鑒定正常血清作對照; 被檢的標本是組織細胞就用相應的組織細胞作對照。②試劑對照:在PCR試劑中不加模板DNA或RNA，進行PCR擴增，以監測試劑是否污染。

選擇質量好的Eppendorf管，以避免樣本外溢及外來核酸的進入，打開離心管前應先離心，將管壁及管蓋的液體甩至管底部，開管動作要輕，以防管內液體濺出。PCR污染與對策

防治污染的方法:30PCR污染原因分析

實驗室污染的檢測一、

如果陰性對照標本的擴增結果為陽性原因：1、實驗室擴增產物的污染。2、實驗室操作所致的樣本間的交叉污染，如強陽性標本氣溶膠加樣器所致的污染、強陽性標本經操作者的手所致的污染、使用翻蓋離心管核酸提取時在較高溫時崩開等。3、擴增反應試劑的污染。陽性結果說明上述三個環節中有可能在一個或幾個環節中出了問題。PCR污染原因分析

實驗室污染的檢測31PCR污染原因分析

試劑（擴增反應混合液）擴增的結果為陽性原因：擴增試劑發生污染，如想鑒別試驗室是否發生污染，可將一個或多個空管打開，靜置標本制備區30~60分鐘，然后加入擴增反應混合液擴增，如為陽性，則說明實驗室以前擴增產物的存在，污染了整個實驗室。試劑（擴增反應混合液），用水替代核酸樣本擴增，如為陰性，說明試劑質量是好。PCR污染原因分析

試劑（擴增反應混合液）擴增32

關于PCR假陽性問題

PCR假陽性的問題是比較單純的，一般僅涉及污染和引物的非特異性問題。而污染可以通過嚴格的實驗室管理，合理的環境設置，以及加入UNG酶抗污染基本可以解決，而引物的非特異性問題基本屬于廠家試劑質量問題。

PCR的假陰性卻不同，他涉及了PCR實驗的人員和技術環節，十分復雜。就臨床而言，三大陽檢出率低，或PCR檢測陰性經常發生，可見假陰性問題的嚴重性。

關于PCR假陽性問題PCR假陽性的問題是33PCR假陰性問題總體來說有如下因素：

一

儀器因素

PCR實驗對儀器的依賴性是很高，離心機、擴增儀都是造成PCR假陰性的因素。擴增儀的主要的影響是孔間差，引起擴增失敗或擴增效率降低。而離心機的影響則更容易被忽視。國內使用離心機很少使用離心加速度（XXXg）PCR假陰性問題總體來說有如下因素：

一

儀器因素34

作為參考指標，由于離心機的大小不同，有效離心半徑也不相同，因此同樣的轉速所產生的離心力相差很大（有的在數倍以上），造成PCR假陰性。這個問題在其他實驗也有，但因其他實驗都是測大分子蛋白沉淀，對離心的速度要求較低所以不太明顯。建議使用小型臺式離心機的實驗要注意這個問題。作為參考指標，由于離心機的大小不同，有效離心半徑也35

試劑質量問題

PCR實驗的成功與否試劑的質量至關重要，試劑的質量問題涉及多個方面：細胞的裂解；模板的抽提；引物位點的選擇；Tap酶的活性等等。其中任一環節出了問題都會引起結果的假陰性。這些都是試劑質量的問題，因此選用高質量的PCR試劑非常重要。

試劑質量問題36核酸模板問題

核酸模版質量是制約PCR最重要的因素之一。核酸模板在擴增區出現斷裂、蛋白粘附等模版質量問題，都有可能引起擴增失敗造成結果的假陰性或定量不準確。無論什么提取方法都不可能得到完全理想化的核酸模板，因此核酸模板質量雖然與試劑的質量有關但它不可能由試劑質量完全決定。核酸模板問題除了模板本身的問題外，還存在模板溶液中抑制Tap酶活性成分（如某些蛋白、離子等）作用，導致擴增效率降低甚至擴增失敗的問題。核酸模板問題

核酸模版質量是制約PCR最重要的因素之一37操作人員素質問題

PCR實驗的環節很多，而且對每一環節的質量要求都很高，例如少加、漏加試劑、離心不充分、循環參數設計錯誤、由于RNA抽提降解、逆轉錄失敗等等都能造成結果的假陰性。因此要求PCR的實驗操作人員有良好的素質，能夠嚴格遵守操作規則，并能敏銳的發現問題和解決問題。操作人員素質問題PCR實驗的環節很多，而且對每一環節38生物安全柜的使用生物安全柜biosafetycabinet防止操作過程中含有危害性或未知微生物氣溶膠散逸的空氣凈化安全裝置生物安全柜的使用39II級生物安全柜

用于對人員、受試樣本及環境進行保護且能滿足生物安全柜危險度等級為1、2、3級的病原體操作的生物安全柜。II級生物安全柜的前窗開口區向內吸入負壓氣流用以保護人員的安全；經高效過濾器過濾的垂直氣流用以保護受試樣本的安全；排出氣流經高效過濾器過濾是為了保護環境不受污染。II級生物安全柜40生物安全柜知識簡介II級生物安全柜二級生物安全柜是目前應用最為廣泛飛柜型，是有前窗操作口的安全柜，操作者可以通過前窗操作口在安全柜內進行操作，對操作過程中的人員、產品及環境進行保護。生物安全柜知識簡介41

生物安全柜的使用與注意事項

生物安全柜的使用42正確的使用生物安全柜

應遵循以下使用原則：緩慢移動原則物品平行擺放原則避免震動原則不同樣品柜內移動原則避免明火使用原則定期進行安全柜防護效果的評估正確的使用生物安全柜43

生物安全柜操作程序PCR實驗室標本管理、生物安全和防污染策略課件44一、制定操作步驟、列出明細表、準備好所有材料二、用殺菌肥皂清洗雙手、戴手套；高危險性操作要穿隔離服，戴兩副手套，手套和工作服可在進行實驗時將保護你不受到操作中生物因子的危害，也可以防止人體所攜帶寄生菌對安全柜工作區和實驗樣品的污染。一、制定操作步驟、列出明細表、準備好所有材料45三、如果紫外燈正在工作，進入實驗室后關閉紫外燈，將前窗開至工作高度病開啟熒光照明燈。確保安全柜進氣和排氣區域沒有物體阻礙或干擾，開啟安全柜的風機進行預熱5分鐘，這程序可以清楚安全柜工作區內可能經空氣傳播的污染物，并有助于穩定安全柜的氣流。調節工作椅的高度，是你的肩膀和前窗下緣平行，這樣可以確保你的面部在前窗的保護之下，病有給予你足夠的操作空間。PCR實驗室標本管理、生物安全和防污染策略課件46四、使用適當的消毒液如70%的乙醇擦拭工作區表面包括前方的進氣格櫥。選擇適合并有效的消毒劑主要根據安全柜內實驗的微生物種類和實驗內容所決定。用消毒劑擦拭實驗用品后再將他們移入安全柜內的工作區域內，檢查實驗用品明細表，確保所有的實驗用品都齊備，實驗操作一旦開始后，在安全柜內移入或取出任何物品都是不允許的，請特別注意前方的進氣格櫥上不允許堆放任何實驗物品，否則會阻礙氣流的進入，對氣流造成干擾會影響安全柜的性能。

PCR實驗室標本管理、生物安全和防污染策略課件47五、安全柜的工作區域不允許放置過多的物品，安全柜工作區應該劃分為三個區：潔凈區、工作區、污染區。這三個區域的界定可減少潔凈物接觸污染物品的可能，反之亦然。生物危害性物袋應放在污染區；實驗儀器和樣品應放在工作區；實驗供給品應放在潔凈區內，在工作臺面的實驗操作應從潔凈區到高污染區的方向進行。五、安全柜的工作區域不允許放置過多的物品，安全柜工作區應該劃48六、當你在安全柜內操作時請遵循移動原則，操作當中手臂應盡量平緩移動，為了避免影響正常的氣流狀態，盡量減少手臂的水平橫向移動，手臂進入和離開工作區水平縱向姿勢。

PCR實驗室標本管理、生物安全和防污染策略課件49七、生物安全柜可以有效控制氣溶膠，但無法避免接觸感染。A、最重要的是正確的操作方法；B、將微生物等實驗材料盡量放置在遠離前窗的位置，以避免可能的逃逸，注意蓋緊容品的蓋子；

C、每次操作只用一種樣品，操作結束后窗封該樣品的容品后再操作下一種樣品；

D、立即丟棄空的試劑用品。七、生物安全柜可以有效控制氣溶膠，但無法避免接觸感50八、如果在實驗時出現感染性物質噴濺，應立即用布或紙巾覆蓋溶體并用10%漂白劑溶液浸泡，從溢出的外周開始向中央進行處理，經30分鐘充分接觸后，用適當的設備處理污染物并對溢出區域進行清洗和消毒。清潔濺出液體后，摘除并更換手套，讓安全柜進行幾分鐘以凈化工作區的氣體，并確保用高壓滅菌器處理所有污染材料。八、如果在實驗時出現感染性物質噴濺，應立即用布或紙51安全柜在關機前，讓安全柜繼續運行5分鐘，以凈化內部氣流，用消毒劑清潔所有的實驗用品的外表面，將所用實驗的廢棄物丟入放在污染區的生物危害性廢棄物袋內，摘除更換手套，然后移出所有的實驗用品。PCR實驗室標本管理、生物安全和防污染策略課件52

十、對生物安全柜的表面進行清潔1、工作區臺面；2、工作區側壁和背板；3、前窗；4、前窗的進氣格柵；

當完成安全柜的消毒程序后，關閉日光燈、風機、前窗。

53Thankyou!

Thankyou!54人有了知識，就會具備各種分析能力，明辨是非的能力。所以我們要勤懇讀書，廣泛閱讀，古人說“書中自有黃金屋?！蓖ㄟ^閱讀科技書籍，我們能豐富知識，培養邏輯思維能力；通過閱讀文學作品，我們能提高文學鑒賞水平，培養文學情趣；通過閱讀報刊，我們能增長見識，擴大自己的知識面。有許多書籍還能培養我們的道德情操，給我們巨大的精神力量，鼓舞我們前進。人有了知識，就會具備各種分析能力，55PCR實驗室標本管理、生物安全和防污染策略課件56PCR實驗室標本管理、生物安全和防污染策略

PCR實驗室標本管理、生物安全和防污染策略

57標本采集時間對擴增檢測結果

的影響在疾病發展過程中，標本采集過早或過晚都可能會給出假陰性結果。

標本采集時間對擴增檢測結果

的影響58標本采集部位的準備標本采集部位的清潔消毒可去掉污染的微生物或其他雜物，但應適度，過度清潔消毒有可能會去掉或破壞靶微生物，故標本采集部位的準備應由訓練有素的人員進行。標本采集部位的準備標本采集部位的清潔消毒可去掉污染的微生59標本的類型和采集量標本的類型：血清（漿）、分泌物、痰、尿和腦脊液等。標本的采集量：應根據所測病原體而定。一般來說，如果標本的量對病原體培養夠用的話，則其量亦足以用于核酸提取及其后的擴增檢測對于定量檢測來說，對標本的收集要求更為精確。標本的類型和采集量標本的類型：血清（漿）、分泌物、痰、尿和腦60采集質量的評價血清（漿）標本：溶血、脂血等；分泌物、痰：評價評價內容包括細胞組成，所需類型細胞的數量和核酸總量。評價方法：包括肉眼觀察，顯微鏡下觀察和化學分析等。采集質量的評價血清（漿）標本：溶血、脂血等；61采樣及運輸容器標本的采集材料如棉簽應為一次性使用；運輸容器亦應為密閉的一次性裝置；采集所用的防腐劑、抗凝劑及相關試劑材料不應對核酸擴增及檢測過程造成干擾。采樣及運輸容器標本的采集材料如棉簽應為一次性使用；62標本采集中的防污染

采集中要特別注意污染，防止混入操作者的頭發、表皮細胞、痰液等；如使用玻璃器皿，必須經高溫滅菌，以使用可能存在的RNase失活。標本采集中的防污染63標本運送

樣本一經采集，則應盡可能快的送至檢測實驗室。

樣本中如加入適當的穩定劑，如用于RNA測定加入GITC的血清（漿）樣本和用于DNA測定的EDTA抗凝血等，則可在室溫下運送過郵寄。實驗室應根據待測靶核酸的特性，對各種臨床樣本的運送條件作出相應的規定。

標本運送樣本一經采集，則應盡可能快的送至檢64第一節臨床標本的處理和保存一、血清（漿）標本1.DNA標本DNA標本的獲取、處理和保存，可按照一本的血清標本處理程序即可。2.保存全血樣本用于DNA提取檢測，可4℃下短期保存如用于RNA檢測，則應在取血后盡快提取RNA。

第一節臨床標本的處理和保存65容器的使用容器的使用662.RNA標本處理和保存對于RNA測定，標本的獲取、處理和方式對測定結果有決定性影響。研究表明，用于RNA測定的血漿標本最好是使用EDTA抗凝（嚴禁使用肝素，因其對PCR擴增有幾只，且很難在核酸提取過程中完全去除），抗凝后6小時內分離血漿保存；如使用血清標本，則需盡快（2小時）分離血清后保存。保存時間短時（1-2周）可放-20℃下，較長期時應在-70℃下。

2.RNA標本處理和保存對于RNA測定，標本67二、全血標本以全血作為

待測標本時1.抗凝劑的選擇以全血作為待測標本時，一般使用EDTA-Na2或枸櫞酸鈉，不可使用肝素。2.保存全血樣本用于DNA提取檢測，可4℃下短期保存，如用于RNA檢測，則應在取血后盡快提取RNA。

二、全血標本以全血作為

待測標本時68三、外周血單個核細胞外周血單個核細胞可從抗凝全血制備，主要有兩條途徑，一是使用淋巴細胞分離液分離制備；二是使用紅細胞裂解液，裂解全血中的紅細胞，經生理鹽水數次洗滌，即可看到單個核細胞。保存外周血單個核細胞如暫不提取核酸，可保存于-70℃下。三、外周血單個核細胞外周血單個核細胞可從抗凝全血制備，主要有69四、痰特點痰屬于分泌物，痰標本中含有大量粘蛋白和雜質。處理1、如作結核桿菌DNA測定標本，提取核酸前，需對標本進行初步處理，即用1mmol/LNaOH液化。需注意的是，液化時不能加熱，液化時間不能過長。保存液化標本如不立即用于核酸提取，可保存于-70℃下。四、痰特點痰屬于分泌物，痰標本中含有大量粘蛋白和雜質。702、如用于非結核桿菌如肺炎支原體的PCR檢測，痰標本的處理只能室溫懸浮于生理鹽水中，充分震蕩混勻，促使大塊粘狀物下沉，取上清離心，所得到的沉淀物即可用于核酸提取。2、如用于非結核桿菌如肺炎支原體的PCR檢測，痰標本的處理只71五、棉拭子使用PCR方法檢測性疾病病原體時，臨床標本一般為棉拭子，可將棉拭子置于適量生理鹽水中，充分震蕩洗滌后，取上清立即離心，其后的沉淀即可用于DNA提取。保存如不立即用于核酸提取，則需保存于-70℃下。五、棉拭子使用PCR方法檢測性疾病病原體時，臨床標本一般為棉72六、膿液膿液的處理依情況而定。如用于分枝桿菌（如結核桿菌）核酸測定的標本，粘稠的膿液可采用痰標本的處理模式，先進行液化，再離心取沉淀提取DNA；水樣的膿液則直接離心，沉淀用于生理鹽水洗2-3次后，即可用于DNA提取。六、膿液73對于用于非分枝桿菌測定的膿液標本，如過于粘稠，則加入適量生理鹽水，充分振蕩后，靜置，取上清立即離心，沉淀用于DNA提?。蝗鐬樗畼?，則按上述直接離心取沉淀即可。保存沉淀標本的保存條件同樣為-70℃。PCR實驗室標本管理、生物安全和防污染策略課件74七、體液臨床體液標本包括胸水，腹水，腦脊液，尿液等，可按水樣標本的方式直接離心取沉淀提取核酸。沉淀樣本的保存同上。七、體液75八、組織組織分新鮮組織塊和石蠟切片。新鮮組織塊的處理步驟首先用生理鹽水洗兩次，然后將其搗碎或切碎，加入生理鹽水后劇烈震蕩混勻，離心，棄上清，再加蛋白酶K消化后提取核酸。保存新鮮組織最好是保存于50%乙醇中，具體作法是，先用生理鹽水將組織洗一次，切成寬度小于1cm的小片，加入適量的生理鹽水，然后，邊搖邊加入無水乙醇至濃度為50%，這樣固定的組織標本室溫下可保存數日，4℃可保存6年。八、組織組織分新鮮組織塊和石蠟切片。76保存新鮮組織最好是保存于50%乙醇中，具體作法是，先用生理鹽水將組織洗一次，切成寬度小于1cm的小片，加入適量的生理鹽水，然后，邊搖邊加入無水乙醇至濃度為50%，這樣固定的組織標本室溫下可保存數日，4℃可保存6年。石蠟切片用于核酸提取，需先用辛烷或二甲苯脫蠟，再用蛋白酶K消化后可進行DNA提取。保存新鮮組織最好是保存于50%乙醇中，具體作法是，先用生77小結1、標本的收集及適當的預處理，對用于PCR測定的核酸模板的成功提取，具有決定性作用。2、要著重強調的一點是，所有用于上述臨床標本收集的容器如試管或離心管，均應使用前高壓滅菌。小結1、標本的收集及適當的預處理，對用于PCR測定的核酸模板78PCR實驗室標本管理、生物安全和防污染策略課件79PCR污染與對策

PCR反映的最大特點是具有較大擴增能力與較高的靈敏性，但令人頭痛的問題是易污染，機器微量的污染即可造成假陽性的產生。實驗中設立的陰性對照可提示有無假陽性結果出現。如果一次試驗中的幾個陰性對照結果中出現一個或幾個陽性結果，提示本次試驗中其他標本的檢驗結果可能有假陽性。造成假陽性的原因包括樣品污染擴增試劑污染擴增產物交叉污染等常見的污染來源包括實驗室環境、加樣器、操作中形成的噴霧、DNA抽提、儀器、試劑及其他與擴增產物接觸的物品。PCR污染與對策

PCR反映的最大特點是具有較大擴增能力與較80PCR污染與對策

污染的原因來自其他測試樣品污染：標本污染主要有收集標本的容器被污染，或標本放置時，由于密封不嚴溢出容器外，或容器外貼有標本而造成相互間交叉污染；標本核酸模板在提取過程中，由于吸樣槍污染導致標本間污染;微生物可隨氣溶膠或形成氣溶膠而擴散，導致彼此間的污染。PCR污染與對策

污染的原因81PCR污染與對策

污染的原因

:來自實驗材料或者配制過程中，由于加樣槍、容器、雙蒸水及其它溶液被PCR核酸模板污染。

“遺留”污染。這是PCR反應中最常見的污染問題。因為PCR產物拷貝量大（一般為1013拷貝/ml），高于PCR檢測的拷貝極限，所以極微量的PCR產物污染，就可以造成假陽性。PCR污染與對策

污染的原因

:來自實驗材料或82PCR污染與對策

污染的原因:還有一種容易忽視，最可能造成PCR產物污染的形成是氣溶膠污染，在空氣中與液體面摩擦時就可形成氣溶膠，在操作是比較劇烈地搖動反應管，開蓋時、吸樣時及污染進樣槍的反復吸樣都可形成氣溶膠而污染。一個氣溶膠顆粒可含48000拷貝，因而由其造成的污染是一個值得特別重視的問題。

PCR污染與對策

污染的原因:還有一種容易忽視，最可能造成P83PCR污染與對策

防治污染的方法:

嚴格實驗室分區及其他實驗用品及吸樣槍應專用。實驗前實驗室應用紫外線消毒以破壞殘留的DNA或RNA.

吸樣槍：由于操作時不慎將樣品或模板核酸吸入槍內或黏在槍頭上，是一個嚴重的污染源，因而加樣或吸取模板核酸時要十分小心，吸樣要慢，吸樣時盡量一次性完成，忌多次抽吸，以免交叉污染或產生氣溶膠污染。PCR污染與對策

防治污染的方法:

84PCR污染與對策

防治污染的方法:

分裝PCR試劑：所有的PCR試劑都應小量分裝，PCR反應液應預先配置好，然后小量分裝，-20℃保存，以減少重復加樣次數，避免污染機會，另外，PCR試劑，PCR反應液應與樣品及PCR產物分開保存，不應放于同一冰箱。防止操作人員污染，使用一次性手套、吸頭、離心管應一次性使用PCR污染與對策

防治污染的方法:

85PCR污染與對策

防治污染的方法:

每次PCR實驗務必做陽性對照、陰性對照、陰性對照它包括①標本對照：被檢的標本是血清就用鑒定正常血清作對照; 被檢的標本是組織細胞就用相應的組織細胞作對照。②試劑對照:在PCR試劑中不加模板DNA或RNA，進行PCR擴增，以監測試劑是否污染。

選擇質量好的Eppendorf管，以避免樣本外溢及外來核酸的進入，打開離心管前應先離心，將管壁及管蓋的液體甩至管底部，開管動作要輕，以防管內液體濺出。PCR污染與對策

防治污染的方法:86PCR污染原因分析

實驗室污染的檢測一、

如果陰性對照標本的擴增結果為陽性原因：1、實驗室擴增產物的污染。2、實驗室操作所致的樣本間的交叉污染，如強陽性標本氣溶膠加樣器所致的污染、強陽性標本經操作者的手所致的污染、使用翻蓋離心管核酸提取時在較高溫時崩開等。3、擴增反應試劑的污染。陽性結果說明上述三個環節中有可能在一個或幾個環節中出了問題。PCR污染原因分析

實驗室污染的檢測87PCR污染原因分析

試劑（擴增反應混合液）擴增的結果為陽性原因：擴增試劑發生污染，如想鑒別試驗室是否發生污染，可將一個或多個空管打開，靜置標本制備區30~60分鐘，然后加入擴增反應混合液擴增，如為陽性，則說明實驗室以前擴增產物的存在，污染了整個實驗室。試劑（擴增反應混合液），用水替代核酸樣本擴增，如為陰性，說明試劑質量是好。PCR污染原因分析

試劑（擴增反應混合液）擴增88

關于PCR假陽性問題

PCR假陽性的問題是比較單純的，一般僅涉及污染和引物的非特異性問題。而污染可以通過嚴格的實驗室管理，合理的環境設置，以及加入UNG酶抗污染基本可以解決，而引物的非特異性問題基本屬于廠家試劑質量問題。

PCR的假陰性卻不同，他涉及了PCR實驗的人員和技術環節，十分復雜。就臨床而言，三大陽檢出率低，或PCR檢測陰性經常發生，可見假陰性問題的嚴重性。

關于PCR假陽性問題PCR假陽性的問題是89PCR假陰性問題總體來說有如下因素：

一

儀器因素

PCR實驗對儀器的依賴性是很高，離心機、擴增儀都是造成PCR假陰性的因素。擴增儀的主要的影響是孔間差，引起擴增失敗或擴增效率降低。而離心機的影響則更容易被忽視。國內使用離心機很少使用離心加速度（XXXg）PCR假陰性問題總體來說有如下因素：

一

儀器因素90

作為參考指標，由于離心機的大小不同，有效離心半徑也不相同，因此同樣的轉速所產生的離心力相差很大（有的在數倍以上），造成PCR假陰性。這個問題在其他實驗也有，但因其他實驗都是測大分子蛋白沉淀，對離心的速度要求較低所以不太明顯。建議使用小型臺式離心機的實驗要注意這個問題。作為參考指標，由于離心機的大小不同，有效離心半徑也91

試劑質量問題

PCR實驗的成功與否試劑的質量至關重要，試劑的質量問題涉及多個方面：細胞的裂解；模板的抽提；引物位點的選擇；Tap酶的活性等等。其中任一環節出了問題都會引起結果的假陰性。這些都是試劑質量的問題，因此選用高質量的PCR試劑非常重要。

試劑質量問題92核酸模板問題

核酸模版質量是制約PCR最重要的因素之一。核酸模板在擴增區出現斷裂、蛋白粘附等模版質量問題，都有可能引起擴增失敗造成結果的假陰性或定量不準確。無論什么提取方法都不可能得到完全理想化的核酸模板，因此核酸模板質量雖然與試劑的質量有關但它不可能由試劑質量完全決定。核酸模板問題除了模板本身的問題外，還存在模板溶液中抑制Tap酶活性成分（如某些蛋白、離子等）作用，導致擴增效率降低甚至擴增失敗的問題。核酸模板問題

核酸模版質量是制約PCR最重要的因素之一93操作人員素質問題

PCR實驗的環節很多，而且對每一環節的質量要求都很高，例如少加、漏加試劑、離心不充分、循環參數設計錯誤、由于RNA抽提降解、逆轉錄失敗等等都能造成結果的假陰性。因此要求PCR的實驗操作人員有良好的素質，能夠嚴格遵守操作規則，并能敏銳的發現問題和解決問題。操作人員素質問題PCR實驗的環節很多，而且對每一環節94生物安全柜的使用生物安全柜biosafetycabinet防止操作過程中含有危害性或未知微生物氣溶膠散逸的空氣凈化安全裝置生物安全柜的使用95II級生物安全柜

用于對人員、受試樣本及環境進行保護且能滿足生物安全柜危險度等級為1、2、3級的病原體操作的生物安全柜。II級生物安全柜的前窗開口區向內吸入負壓氣流用以保護人員的安全；經高效過濾器過濾的垂直氣流用以保護受試樣本的安全；排出氣流經高效過濾器過濾是為了保護環境不受污染。II級生物安全柜96生物安全柜知識簡介II級生物安全柜二級生物安全柜是目前應用最為廣泛飛柜型，是有前窗操作口的安全柜，操作者可以通過前窗操作口在安全柜內進行操作，對操作過程中的人員、產品及環境進行保護。生物安全柜知識簡介97

生物安全柜的使用與注意事項

生物安全柜的使用98正確的使用生物安全柜

應遵循以下使用原則：緩慢移動原則物品平行擺放原則避免震動原則不同樣品柜內移動原則避免明火使用原則定期進行安全柜防護效果的評估正確的使用生物安全柜99

生物安全柜操作程序PCR實驗室標本管理、生物安全和防污染策略課件100一、制定操作步驟、列出明細表、準備好所有材料二、用殺菌肥皂清洗雙手、戴手套；高危險性操作要穿隔離服，戴兩副手套，手套和工作服可在進行實驗時將保護你不受到操作中生物因子的危害，也可以防止人體所攜帶寄生菌對安全柜工作區和實驗樣品的污染。一、制定操作步驟、列出明