關于流感病毒實驗室檢測第1頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日流感監測目的（一）監測流感活動水平和流行動態；（二）及時發現流感病毒變異并作出預警；（三）為全球及我國流感疫苗毒株的預測和推薦提供依據。第2頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日流感監測內容（一）流感樣病例監測（二）流感樣病例暴發疫情監測第3頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日流感樣病例監測標本采集采集對象：流感樣病例

發熱（體溫≥38℃），伴咳嗽或咽痛之一者采集時間：病人發病的頭3天內采集采集地點：國家級流感樣病例監測哨點醫院采集數量：根據就診ILI病例數的多少，每家哨點醫院每周至少采集5～15份流感樣病例的標本(根據流行季節、流行強度、防控工作需要實時調整）第4頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日暴發疫情標本采集（1）1周內，在同一學校、幼兒園或其他集體單位發生30例及以上流感樣病例；或發生5例及以上因流感樣癥狀住院病例（不包括門診留觀病例）；或發生2例及以上有流行病學關聯的死亡病例；（2）在某一社區內（如同一鄉或街道）1周內出現流感樣病例異常增多。每一起暴發疫情一般應當采集10份左右咽、鼻拭子標本（如果現癥病例在10例以下的，應當盡量全部采樣）。第5頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日采集標本類型常規

特殊咽拭子鼻咽/呼吸道吸取物鼻拭子鼻洗液痰液呼吸道灌洗液肺組織活檢標本尸檢標本第6頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日采樣液常用的采樣液有：PH7.4-7.6的Hank’s液或MEM；標本采集后應立即放入適當的采樣液中低溫保存，同時加入抗菌素（入慶大霉素50mg/mL，多粘菌素B250μg/mL）第7頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日咽拭子采集咽拭子

用滅菌棉簽（最好用聚丙烯纖維頭的塑料桿拭子）擦拭雙側咽扁桃體及咽后壁，將棉簽頭部浸入含3-4ml采集液的管中，尾部棄去，旋緊管蓋。第8頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日標本的保存與運送標本采集后應在4℃條件下，盡快（哨點監測48小時疫情24小時內）運送至流感監測網絡實驗室未能送至實驗室的，應置-70℃或以下保存，一周內送實驗室凍存的標本，盡量避免其反復凍融，在冷藏條件下送到實驗室第9頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日實驗室生物安全要求季節性流感病毒分離鑒定在生物安全Ⅱ級實驗室進行。流感病毒分離鑒定及其它檢測過程中所有能夠產生感染性氣溶膠的過程必須在生物安全Ⅱ級實驗室的生物安全柜里操作。用滅活的抗原進行血清學檢測時可以在生物安全Ⅰ級實驗室進行第10頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日標本的接收接收標本時必須核對送檢表流感監測網絡實驗室的工作人員接到標本后，24小時內將“流感/人禽流感監測病例標本原始登記送檢表”（表2）錄入到“監測信息系統”第11頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日標本的處理標本送至實驗室后，立即進行處理，未加抗菌素的加入適量的抗菌素。將原始標本一分為三份，一份（1ml）用于MDCK細胞接種，一份（1ml）用于雞胚接種，一份（1ml）保存待復核。（根據檢測程序實時調整）第12頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日實驗室檢測◆核酸檢測◆病毒分離和鑒定：雞胚分離和細胞培養◆膠體金快速檢測第13頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日檢測流程臨床標本采集接種MDCK細胞接種雞胚紅細胞凝集抑制試驗，鑒定病毒紅細胞凝集試驗寄送國家流感中心流感病毒核酸檢測陽性第14頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日核酸檢測核酸提取-QIAamp?ViralRNAMiniKit1）在1.5ml離心管中加入AVL（病毒裂解液）560ul。2）取采樣液（鼻拭子、咽拭子、胸水等）或病毒培養物（雞胚尿囊液或細胞培養液）140ul加入上述離心管中（糞便標本用10％懸液的上清），震蕩15s，室溫放置10min。3）稍離心后，加入560ul無水乙醇，震蕩15s。4）將ViralRNAMinispin柱子取出，將步驟3的混合液吸取630ul加入柱子中，8000rpm離心1min。棄離心液。5）重復步驟4。6）將吸附柱放入一新的2ml套管中，加入500ulAWl液，8000rpm離心1min。棄套管及其離心液。7）將吸附柱放入一新的2ml套管中，加入500ulAW2液，13000rpm離心3min，棄套管及其離心液。8）將吸附柱放入一新的1.5ml離心管中，于柱中加入60ul的AVE液，室溫靜置1－3分鐘，8000rpm離心1min，收集離心液即為提取的病毒RNA，立即實驗或－20℃以下保存。第15頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日熒光定量PCR第一次使用前引物稀釋1．引物工作濃度（40μM）配制方法：（1）將新合成的引物開蓋前短暫離心（12000rpm，15s）。（2）用RNaseFreeWater溶解，加水量為10×總摩爾數，充分混勻，此時引物濃度為100μM，可作為儲存液。（例如：假設合成引物每管2OD，若2OD的量為9.1nmol，加水量為10×9.1＝91μl）（3）將100μM的引物2.5倍稀釋，此時濃度為40μM，可作為工作濃度。2．探針工作濃度（10/20μM/）配制方法：（1）將新合成的探針管開蓋前短暫離心（12000rpm，15s）。（2）用RNaseFreeWater溶解，加水量為10×總摩爾數，充分混勻，此時引物濃度為100μM，可作為儲存液。（3）將100μM的探針10/5倍稀釋，此時濃度為10/20μM，可作為工作濃度。第16頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日熒光定量PCR引物和探針稀釋好的冰凍的引物和探針進行融化（已融的探針避光2-8℃可保存多達3個月，不要對探針反復凍融）；渦旋振蕩引物和探針；瞬時離心引物和探針，之后置于冰架上。real-timeRT-PCR的試劑QIAGEN公司QuantiTectProbeRT-PCRKit，CatNo.204443注意：在試驗過程中，保持所有的試劑在冰架上保持低溫。第17頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日熒光定量PCR反應體系和條件試劑：InvitrogenSuperScript?IIIPlatinum?One-StepQuantitativeKit（公司：Invitrogen，貨號：11732-020或11745-100）分子級無菌蒸餾水(無RNA酶和DNA酶)正反向引物(40μM)雙重標記探針(10μM)反應條件：逆轉錄50℃30min→95℃2min→（95℃15s→55℃30s*）×45反應體系為25ul注：*在55度這一步驟中要收集熒光信號（FAM）第18頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日熒光PCR結果－陽性樣品第19頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日熒光PCR結果－陰性樣品第20頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日熒光PCR結果－可疑樣品第21頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日病毒分離-MDCK細胞標本接種MDCK細胞每日觀察細胞病變(CPE)MDCK細胞收獲33－35℃培養第22頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日接種流程清洗MDCK細胞臨床采樣標本接種細胞Hank’s液清洗細胞，一般清洗2遍33－35度吸附1－2小時Hank’s液清洗細胞加入病毒生長液，33－35度培養箱培養24小時后，觀察細胞病變。當細胞病變為3+或4+時，即75～100%細胞出現病變時進行收獲，收獲之前將細胞凍融1～2次，以提高收獲標本的病毒滴度。即使無細胞病變也應該于第7天收獲（細胞病變情況：細胞病變的特征是細胞腫脹圓化，細胞間隙增大，細胞核固縮或破裂，嚴重時細胞部分或全部脫落）根據使用的細胞瓶的大小，決定接種量，一般的小細胞瓶接種0.5ml的臨床標本流程圖第23頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日MDCK細胞病毒分離CPE出現時間與感染病毒的型別、毒株的差異、感染量的大小和MDCK細胞的敏感性有關每日觀察細胞病變(CPE)標本接種后7天還未出現CPE，維持液經HA試驗陰性者，繼續盲傳1～2代后，HA試驗仍為陰性者，則MDCK細胞病毒分離為陰性，標本可棄去第24頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日細胞病變圖第25頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日雞胚病毒分離標本接種于9日齡雞胚33℃～35℃培養72小時檢卵標本準備第26頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日第27頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日雞胚分離方法-試劑準備1)

9～11日齡雞胚2)

照蛋燈3)

70%～75％酒精4)

1ml一次性注射器5)

雞蛋開孔器6)

無菌膠布或蠟7)

10ml試管和試管架8)

10ml移液管或1ml移液器及無菌吸尖9)

無菌鑷子10)無菌眼科剪第28頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日雞胚分離方法-標記雞胚■檢視標記雞胚◆

用照蛋燈檢視雞胚，判斷雞胚狀態血管：活胚血管清晰；死胚模糊，成淤血帶或淤血塊胎動：活胚有明顯的自然運動，死胚無胎動絨毛尿囊膜發育界限：密布血管的絨毛尿囊膜與雞胚胎的另一面形成明顯的界限

◆標記出雞胚的氣室與尿囊的界限、胚胎頭部的位置

◆如果雞胚是死胚、沒有受精、有裂痕、發育不全、或表面有好多滲水孔，應棄掉第29頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日■接種病毒方法◆

單腔接種盲種◆雙腔接種燈下接種

開窗接種雞胚分離方法第30頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日雞胚分離流程（1）

◆將標記好的雞胚的氣室朝上放置在蛋盤上，通常每個樣本接種3個雞胚

◆用70%～75％酒精消毒雞胚，在氣室端鉆孔，開10x6mm窗口

◆用注射器吸200μl處理過的臨床標本，裝上16號針頭

◆從窗口中滴入無菌的液體石蠟，然后輕輕晃動雞胚，讓液體石蠟在雞胚殼膜內層鋪開，此時在照蛋燈下即可清楚的看到雞胚胎的位置。將注射針頭刺入胚胎的鄂下胸前，用針頭輕輕撥動下顎及腿，當進入羊膜腔時，能看到雞胚隨著針頭的撥動而動，即可注射100μl標本。將針頭退出至?寸，將另外100μl標本注入雞胚尿囊腔第31頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日雞胚分離流程（2）◆用同一注射器和針頭將同一標本依上法接種另外的兩枚雞胚◆將針頭棄于合適的生物安全裝置中◆用消毒過的醫用膠布封口◆

33～35oC溫箱培養雞胚2～3天。臨床采樣標本通常培養3天，病毒傳代通常培養2天雞胚進行病毒分離培養時，每天檢查雞胚生長情況，24小時內死亡的雞胚，認為是非特異死亡應棄去第32頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日雞胚分離流程（3）■收獲尿囊液和羊水■雞胚在收獲前應4℃過夜或至少放置4小時■標記15ml無菌塑料管與相應的雞胚編號一致■用70%～75％酒精消毒雞胚頂部■用無菌鑷子撕破雞胚氣室蛋殼，推開雞胚尿囊膜。用10ml吸管吸取雞胚尿囊液置于相應的收集管中。用吸管刺破雞胚羊膜，盡量吸取羊水放置于另外的管中。羊水較少時也可以將3個雞胚的羊水合并第33頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日雞胚病毒鑒定經HA試驗陰性者，將羊水和尿囊液混合，繼續盲傳1代（72小時），如仍為陰性，則雞胚病毒分離為陰性，標本可棄去雞胚收獲HA試驗第34頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日病毒鑒定紅細胞凝集紅細胞凝集抑制試驗第35頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日病毒鑒定流程紅細胞凝集試驗4個凝集單位配制“回滴”紅細胞凝集抑制試驗判定流感病毒型別第36頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日紅細胞凝集試驗（HA）MDCK細胞或雞胚收獲的標本分離物首先用雞、豚鼠或人紅細胞進行紅細胞凝集試驗（HA），確定病毒滴度

原理：流感病毒顆粒表面的血凝素蛋白（HA）含有能結合并識別紅細胞表面含唾液酸的糖蛋白或脂蛋白結構，許多哺乳動物和禽的紅細胞表面均含有這兩種成分。因此流感病毒能與其結合并識別，產生凝集現象。當血清中有特異性抗體與病毒血凝素結合后，可以抑制凝集現象出現第37頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日紅細胞雞火雞豚鼠人O型血紅細胞馬適用范圍流感和禽流感病毒流感和禽流感病毒流感病毒流感病毒禽流感病毒終濃度（％）0.5（1%）0.5（1%）0.75（1.5%）/0.5（1%）0.75（1.5%）/0.5（1%）0.5（1%）孔底部形狀U或V型U或V型U型U型U型孵育時間30min30min45min45min60min細胞對照細胞沉積成圓點狀，傾斜時細胞向下流成淚滴狀細胞沉積成圓點狀，傾斜時細胞向下流成淚滴狀細胞沉積成環狀細胞沉積成環狀細胞沉積成環狀第38頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日AHBCDEFG100ul病毒液50ul50ul50ul50ul50ul50ul50ul50ul50ul50ul50ul50ul稀釋完病毒液后加入50ul紅細胞懸液50ulPBS稀釋病毒加入配制好的紅細胞懸液充分混勻，置室溫孵育30-60分鐘觀察記錄結果第39頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日病毒原液1：21：128HA：32HA＞128HA：4第40頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日紅細胞凝集試驗（HA）HA滴度≥8，進行紅細胞凝集抑制（HI）試驗；HA滴度<8者，繼續在敏感的MDCK細胞系或雞胚上進行傳代培養，使其HA滴度≥8后，再進行HI測定若傳1～2代后，HA滴度仍<8者，可應用核酸檢測方法進行鑒定第41頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日紅細胞凝集抑制（HI）試驗HA試驗完成后，用國家流感中心每年提供的抗A（H1N1）、抗A（H3N2）、抗B（Victoria系）和抗B（Yamagata系）4種標準參照血清，進行紅細胞凝集抑制（HI）試驗，確定病毒的型別和亞型，進行HI試驗時，需同時進行4種標準抗原對照。第42頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日紅細胞凝集抑制試驗步驟4個凝集單位的配制和檢測稀釋血清加入25ul4個血凝單位抗原，室溫孵育15-30分鐘每孔加入50ul紅細胞懸液，充分搖勻。室溫孵育30-60分鐘觀察記錄結果第43頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日4個凝集單位的配制和檢測4個凝集單位的配制讀取紅細胞凝集試驗的結果計算所須的4個凝集單位的病毒用量用50ul檢測4個凝集單位時，用凝集效價除以8，所得商即為4個單位的稀釋度用紅細胞凝集試驗“回滴”，復核4個凝集單位用50ul，前4孔完全凝集。此時的抗原即為4個凝集單位第44頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日紅細胞凝集抑制試驗稀釋血清12765349810H1血清50ulH3血清50ul50ulPBSB血清50ul25ulPBS25ul25ul25ul25ul25ul25ul25ul25ulB血清50ulH3血清50ulH1血清50ul第45頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日流感病毒的型別判定標準參照血清對待鑒定病毒的抑制效價≥20才可以算為陽性一個待鑒定病毒不能同時被兩種或兩種以上的標準血清抑制待鑒定病毒與標準參照血清有交叉抑制，但與一種標準參照血清抑制效價大于其他參照血清4倍以上時，可以判定為此型別的流感病毒第46頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日紅細胞凝集抑制試驗-質量控制使用的試劑可靠無誤處理后的血清有無殘余非特異性凝集素讀取HA試驗的結果是否正確4個血凝單位是否準確紅細胞陰性對照待鑒定病毒確保沒有被細菌污染稀釋血清、病毒、紅細胞懸液加入量準確第47頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日結果錄入

流感監測網絡實驗室的工作人員在完成病毒分離后，24小時內將病毒分離結果錄入“監測信息系統”中的“病毒分離、鑒定結果登記一覽表”中。第48頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日毒株的送檢系統自動生產的送檢單，省里和國家均送檢時限要求包裝要求第49頁，共60頁，星期日，2025年，2月5日省級參比中心開始啟動9個（30%）省級CD