豬捷申病毒的危害及國內疫病流行現狀崔尚金中國農業科學院哈爾濱獸醫研究所主要內容PTV的危害PTV的歷史PTV的流行病學PTV的診斷國外消滅該病的措施及歷程在我國的發現及流行情況我國可能采取的措施研制疫苗的優缺點我國豬病流行情況一、PTV的危害豬捷申病是由小RNA病毒科捷申病毒屬中的豬捷申病毒(PTV)感染所致.主要引起豬的腦脊髓炎、肺炎、下痢、心包炎和心肌炎、及母豬繁殖障礙。目前在我國主要為混合感染：和豬繁殖與呼吸綜合征病毒(PRRSV)、豬圓環病毒Ⅱ型(PCV2)混合感染較多，主要引起高熱病、流產、仔豬死亡以及腹瀉、腸炎等。1.1腦脊髓炎血清1、2、3、5型毒株均可引起腦脊髓炎，但不同毒株致病性不同。血清1型毒株引起的病死率高，且多為急性發?。?、3、5型引起的病癥輕微、病死率低。潛伏期因感染的毒株和毒量而異，一般為4～28d?；疾∝i初期體溫升高，可達40℃～41℃或更高，表現為精神萎靡，厭食和后肢麻痹，繼而共濟失調，呈犬坐式或前后肢癱軟，類似偽狂犬。隨著病情加重，呈現腦炎病癥，四肢僵硬，站立時頭傾向一側，眼球、肌肉發生劇烈震顫并伴有陣攣性驚厥。受到刺激時引起強烈的角弓反張，對聲音極為敏感，可引起病畜大聲尖叫，驚厥一般可持續24～36h，體溫驟降后出現昏迷，于3、4d后死亡。輕癥病例，經過精心照料可以恢復，但耐過豬可能表現肌肉萎縮、四肢麻痹或癱瘓等后遺癥。1.2母豬繁殖障礙表現為不孕、產木乃伊胎和死胎等。在妊娠1～15d感染，胚胎死亡后被吸收，導致產仔數下降；妊娠30d左右感染胎兒死亡率達20%～50%；妊娠45d以后感染胎兒死亡率為20%～40%。胎兒死亡率的上下，多數由感染毒株的血清型不同所致。在中后期感染，多產出腐敗死胎、木乃伊胎或新鮮尸體有一局部為畸形和水腫。存活的仔豬表現虛弱，常在出生幾天后死亡。經產母豬常不表現任何病癥。妊娠母豬感染后，可獲得免疫力，以后可正常生產。1.3肺炎豬捷申病毒在腸管內增殖時可以促進其它病原微生物繁殖，誘發肺炎。臨床表現為呼吸加快、咳嗽、食欲減退、精神不振等病癥。1.4下痢當機體機能下降時感染病毒，促使腸道中的常在菌或其它病原微生物的病原性增強，引起輕微腹瀉。該病毒對腸道的致病作用還不太清楚，從下痢仔豬糞便中經常可別離到該病毒。1.5心肌炎和心包炎從心臟可以別離得到病毒。感染試驗豬可產生心肌炎和心包炎。具體機理現在不清楚。臺灣PTV致病致病機理與疫苗研發2000年自南投縣送檢病例別離出豬捷申病毒(Porcineteschovirus；PTV)，同年起臺灣各地陸續發現豬只感染PTV，困擾國內豬只飼養業。PTV不但具有高度傳染性與高死亡率，病豬具神經病癥，且恢復豬只發生消瘦、生長緩慢之現象。因此養豬場一旦發生此病，常造成仔豬之低育成率經濟損失。臺灣養豬場PTV感染甚為普遍，由于感染PTV有神經病癥及共濟失調等病癥出現，常與豬瘟、PRV相似，需進行類癥鑒別及實驗室診斷，PTV的致病嚴重性以及其在養豬產業界所擔任的角色須進一步探討。為開展適合田間流行PTV血清型別的疫苗，調查目前養豬場PTV感染情形與血清型分布狀況，了解PTV的致病機轉及與其他病原共同感染之危害性。研究病毒蛋白之抗原性及免疫原性，作為開發活毒疫苗及亞單位疫苗的可能性，以達預防及控制本病之發生。方案主要研究PTV毒力及病毒分布，選擇PTV抗體陰性及陽性豬只逢機分組，豬只進行病毒口鼻接種實驗，經由實驗顯示，接種病毒臺灣別離株具毒力，豬只會出現發燒、下痢、厭食、消瘦、部份豬只后軀麻痹之臨床病癥，剖檢觀察進行全身采樣，抗體陰性組發現豬只感染后病毒經由腸道增殖，感染后第2天出現病毒血癥現象，感染后第10天于大腦及中樞神經、腸道以及腸道淋巴結能檢出PTV病毒。而抗體陽性組亦能感染及出現輕微臨床病癥，感染后第28天于扁桃腺、腸道以及淋巴結能檢出PTV病毒。本病毒能引發高效價的中和抗體，假設需制造活毒疫苗那么須經馴化以減除毒力，或利用病毒基因結構性蛋白VP1研發制造亞單位疫苗。二、歷史和流行過程首次爆發與歐洲1929年首次爆發于原捷克斯洛伐克的捷申小鎮上，當時命名為豬捷申病。當時發病的主要病癥為脊髓灰質炎、神經系統紊亂，死亡率高〔90%以上〕。豬捷申病在歐洲的蔓延隨后的二十世紀50年代，該病蔓延整個歐洲，給工業化養豬帶來了巨大的經濟損失。五十年代，英國和丹麥發現了一種危害較輕的疾病，可以引起中度的系統紊亂，病死率也很低，人們把該病稱之為塔爾凡病和腦脊髓炎。塔爾凡病腦脊髓炎與以上報道不同的是，后來在馬達加斯加以及中歐和東歐地區爆發的豬捷申病毒病中，很少出現腦脊髓炎。而是多呈現肺炎、流產或者腹瀉，以及更多的是混合感染等，造成嚴重的生產力下降，從而造成嚴重的經濟危害。OIE有記載的：白俄羅斯在1996、1999和2005年，摩爾達維亞在2002到2004年，羅馬尼亞在2002年，俄羅斯在2004年，烏克蘭在1996到2005年，拉脫維亞在1997年以及2000到2002年，馬達加斯加在1996到2000年、2002年和2004到2005年，烏干達在2001年以及日本在2002年均向世界動物衛生組織報告了該病的爆發。在其它地區的爆發歷程在歐洲的最后一次及在其他地區爆發西歐最后一次關于捷申病毒腦脊髓炎的報道是在1980年，發生于奧地利。2002年日本爆發的捷申病毒腦脊髓炎得到了實驗室驗證，并通報了OIE。證明亞洲有了此病的存在。雖然1929年Trefny氏最先發現于原捷克斯洛伐克的捷申地區，但是目前捷申病毒己遍布亞洲。在我國及周圍國家與地區大局部豬場均有感染，如越南、泰國、臺灣等，給養豬業帶來巨大損失。以臺灣檢測結果說明亞洲存在的情況及流行的嚴重性：2021年結果2021年共接獲縣市家畜疾病防治所或動物防疫所送檢61場次124頭豬只臟器檢體。經接種于PK-15等細胞進行病毒別離結果，以第二型豬環狀病毒〔porcinecircovirus2;PCV2〕有27場呈陽性為最多；其次依序為豬鐵士古病毒〔porcineteschovirus;PTV〕和豬腸病毒〔其中porcineenterovirusA;PEV-A有9場，porcineenterovirusB;PEV-B有8場〕各有17場呈陽性；豬生殖與呼吸綜合癥病毒〔porcinereproductiveandrespiratorysyndromevirus;PRRSV〕有8場，里奧病毒〔reovirus；ReoV〕有7場，假性狂犬病病毒〔pseudorabiesvirus；PrV〕和豬流感病毒〔swineinfluenzavirus；SIV；H1N2〕各有3場，以及日本腦炎病毒〔JapaneseBencephalitisvirus；JEV〕、豬小病毒〔porcineparvovirus;PPV〕和赤羽病病毒〔Akabanevirus〕各有1場病毒別離呈現陽性。此外，有12場可別離出豬鼻炎霉漿菌〔Mycoplasmahyorhinis;M.hyorhinis〕。豬圓環病毒及豬捷申病毒對豬瘟LPC疫苗效力的影響近年來盛傳仔豬育成率不佳，尤其以保育階段的問題最傷腦筋，究其實，保育豬剛離開母豬，不僅受到環境改變的緊迫因子沖擊，其移行抗體也逐漸下降，對疾病的抵抗力也日趨轉弱，因此，飼養及衛生管理一有疏失疾病即趁虛而入。在本所去年的病性鑒定效勞中，豬捷申病毒與豬圓環病毒感染已躍居國內豬病的前一、二名，為了解該二種病毒對兔化豬瘟〔LPC〕疫苗之免疫效果是否會造成影響，乃進行此試驗。本試驗利用早期離乳隔離飼養與孕育無PCV種豬的方式，共生產二十頭無PCV抗體及無PTV抗體豬只，將此等豬只分成四組，其中三組為試驗組，每組有六頭豬只，分別再平分成二小組，第一組豬只分別接PCV2，其中一半豬只分別再免疫一劑LPC疫苗；第二組豬只分別接PTV，其中一半豬只分別再免疫一劑兔化豬瘟疫苗；第三組豬只分別同時接種豬PCV2和PTV，其中一半豬只分別再免疫一劑LPC疫苗，第四組有二頭豬為對照組予以免疫一劑LPC疫苗，之后，臨床觀察十四天，至第三周采取其血清進行血清中和試驗。結果，除接PTV豬只在臨床上出現下痢病癥外，尚有一頭接PTV豬只出現神經病癥終至死亡。而兔化豬瘟疫苗免疫后之中和抗體力價，第一、二、三組豬只產生的豬瘟中和抗體力價明顯高于第四組，因此豬只同時進行該等病毒感染與LPC疫苗免疫，似乎不會影響兔化豬瘟疫苗在豬體引發中和抗體的產生。2007年江蘇地區豬高熱病病例中PCV2、PPV、PRV、PRRSV、CSFV、JEV、EMCV、PEV、PTV的檢測

朱麗娜

結果顯示61份病料為PCV2陽性,陽性率為43.3%;96份病料為PRRSV陽性,陽性率為68.1%;69份病料為CSFV陽性,陽性率為48.9%;67份病料為PTV陽性,陽性率為47.5%;34份病料為PEVB陽性,陽性率為24.1%;9份病料為EMCV陽性,陽性率為6.4%;PPV、PRV、JEV、PEVA均未為檢出;其中PCV2、PRRSV混合感染陽性率最高,141份病料中有52份,占總數的36.9%,且有12份為PRRSV、PCV2和CSFV的三重混合感染,占總數的8.5%,同時,PCV2、PRRSV、PTV的混合感染有8份,占總數的5.7%;在混合感染病例中,PRRSV和CSFV混合感染居第二,141份病料中有41份,占總數的29%,PRRSV和PTV的混合感染為第三,141份病料中有35份,占總數的24.8%。?揚州大學?2021年43個豬場中，PRRSV發病場17個，豬瘟13個，PTV31個，分別占39.5%，30.2%，72.1%。國內某藍耳病陰性豬場檢測血清學結果與討論豬場陽性率從44％到90％不等。715份血清中有399份呈PTV抗體陽性，平均陽性率為55.8%同一窩仔豬，PTV陽性率從4周齡的40％到16周齡的100％。PTV抗體陽性率隨著日齡的增加而升高。PTV在環境中廣泛存在這只是一個場的結果，需要進行更多調查三、流行病學豬是豬捷申病毒的唯一宿主，不同年齡的豬均易感，幼齡豬易感性較強。病豬、康復豬和隱性感染豬是本病的主要傳染源。該病多為散發，在大型養豬場可表現為地方流行性。豬感染本病毒后，可通過糞便持續大量地排出病毒，污染飼料、飲水。經消化道或呼吸道，也可通過眼結膜和生殖道粘膜感染其他各年齡段豬群。懷孕母豬帶毒期約為3個月，可經胎盤感染胎兒。未懷孕母豬感染后，帶毒期也可達2個月。在同一個豬群中可有多個血清型，任何年齡豬在感染某一血清型毒株后，可再感染其它血清型毒株。口服活疫苗、接種滅活疫苗以及腸道病毒感染的競爭作用使病豬排毒的數量和排毒的時間有顯著差異。病豬發病急性期的早期，通過鼻拭子或肛拭子即可檢測到病毒，但是在糞便中的排毒時間更長。在發病期，豬-豬直接傳播是主要的傳播方式，糞-口途徑或通過污染物的外表及飲水也是本病的重要的傳播方式。

四、診斷4.1-1病毒的別離4.1-2病毒別離病毒別離的最好樣品是糞便和肛拭子、喉拭子和腦、脊髓液，在發病急性期的早期采集喉拭子和腦脊髓液有利于病毒的別離。對于疑似病例，可用糞便樣品進行病毒的別離，因為病毒在腸道內一直保持很長時間、高滴度的排毒。在發病急性期的早期，可以經常性地從喉頭別離到病毒。4.2IF及IPMA一般用脊髓、腦干或小腦的組織懸液在PK細胞上培養，初代培養往往病毒含量低，細胞病變不明顯或熒光染色不典型，難作判定，最好盲傳幾代。組織培養細胞可作熒光抗體染色或免疫酶染色鑒定病毒抗原。4.3ELISA及PCR4.4電鏡觀察4.5血清學診斷方法PTV的血清學診斷方法有免疫熒光試驗(IFA)，酶聯免疫吸附試驗(ELISA)、斑點酶聯免疫吸附試驗(Dot-ELISA)及病毒微量中和試驗(VN)等。目前應用最廣泛的是IFA和ELISA。4.7熒光定量PCR4.8鑒別診斷五、國外消滅該病的措施及歷程國外對于本病的研究，己有較長的歷史和良好的根底，而目己證實該病毒疫苗免疫效果良好。早期多用病豬或人工感染豬組織懸液所制成的氫氧化鋁滅活苗，或者表達VP1作為亞單位疫苗效果也很好。幾個實例20世紀50年代初期，該疫苗在東歐一些國家使用后，豬捷申病病死率從5.27%降至0.03%，在嚴重疫區，對全部易感豬注射后，未見本病的再發生。50年代末期，Mory和Correns用豬捷申病毒血清Ⅰ型Konratice株在豬腎細胞連續傳100代以上，培育成功弱毒變異株，制成弱毒活疫苗或滅活疫苗，可誘導仔豬產生相應的保護性抗體，采取人工攻毒(腦內接種)的方法，保護率在80%以上。Teschendisease(Teschovirusencephalomyelitis)

eradicationinCzechoslovakia:ahistoricalreport六、在我國的發現及流行情況我國臺灣相關研究顯示，臺灣豬場PTV病毒別離率為20%，僅次于PCV2的陽性率。臺灣調查結果說明：豬捷申病是近年來豬只的新興疾病。全臺灣豬只抗體檢測顯示，豬群的陽性率占七成，同時每年的豬只病毒性疾病的檢診效勞，也顯示豬捷申病毒的檢出率，居所有豬只疾病之首，可見該病己普遍存在于臺灣豬群。流行的血清型由于豬捷申病病毒有11種血清型，為了解臺灣存在該病毒血清型的數量及其分布于各縣市的情形，透過收集各縣市的豬只糞材拭子，用豬腎臟細胞株別離豬捷申病毒，并采用RT-PCR方法，擴增病毒的局部VP1片段，測序后，與豬捷申病毒不同血清型病毒株進行親緣性分析。結果顯示，在78株別離株病毒中，涵蓋了豬捷申病毒的十種血清型，只缺第5血清型，而各血清型之分布，亦無地域的區隔。國內情況2003年，我所首次有別離到PTV-1的報道。后本實驗室又在某發病豬場別離到PTV-8型病毒。童光志等別離到PTV-2雜交株。后來我們調查別離到PTV-4，5，6，7，8型，但以8型最多。說明國內豬群也存在PTV的感染。但是對此病毒在國內大陸的流行情況和危害還不清楚。血清學調查對黑龍江、山東、天津和河南等地進行的血清學初步調查說明，豬場陽性率從44%-90%不等。715份血清中有399份呈PTV抗體陽性，平均陽性率為55.8%。同一窩仔豬跟蹤調查，PTV陽性率從4周齡的40%-16周齡的100%；PTV抗體陽性率隨著日齡的增加而升高。PTV-2病毒的別離從腹瀉病豬--別離PTV-8病毒別離的病毒回歸動物組織變化觀察從流產病豬--別離病毒發表的文章xxxxxx,Fuyu/2021GQ293231,UKG/149/79GQ293232,UKG/163/79GQ293229,Vir2021/87GQ293230,Vir1925/02xxxxxx,Vir3189/91GQ293238,Vir2374/01GQ293228,Vir2481/020.1AY392535,D61/961.00AY392555,Sek1042/97AY392552,Sek65/971.00AF296100,DS562/91AY392532,DS1520/930.751.00AF296097,TirolAF231767,Bozen6541.00AF231768,Konratice1.00AY392551,Sek2498/960.991.000.59AF296106,5-DVIII1.00AF296103,Vir1626/89AF296104,Vir1627/891.00AF296105,PS340.99AF231769,Talfan1.000.71AF296101,Sek549/98AY392553,Sek655/971.00AF296099,IBRSVAY392554,Sek736/971.000.67AF296098,Teschen-199AJ01138,F650.99AF296102,Vir2236/991.001.00AF292121,DS1696/911.00AY392536,RD181/010.51AF296096,Dresden1.00AF296120,UKG/53/711.00AY392550,1008/881.001.00AY392547,12/15GeAY392548,S776/830.97AY392549,VS7/920.96AF296095,Vir460/88AF296119,Vir461/881.001.00AY392539,UKG/170/801.00AF296088,O2bAY392540,1-AAVI1.001.000.981.00AF296109,Vir480/87AF296108,Vir6793/831.00AY392541,12-PLAY392542,2-AKIII1.000.87xxxxxx,Vir1063/011.000.98AF296107,Vir6711-12/83AY392537,Stendal1.00AF296087,T801.001.00AY392533,DS183/930.98AY392534,DS756/931.001.00AF296093,UKG/173/74AF296118,25-TVII1.00GQ293092,Jilin/20031.001.000.991.00AF296089,PS361.00AF296112,Vir3764/86AF296111,Vir918/851.00AF296113,Vir2500/991.001.001.00AF296116,Vir289/89AF296115,Vir3634/851.00AF296117,21-SZAY392546,121-EIX1.001.00AF296091,PS371.001.00AF296114,Vir1806/89xxxxxx,Sek2160/971.00GQ293235,BL7116GQ239236,BL77921.001.00GQ293234,Sek254/971.00AF296090,F261.00GQ293233,D18/011.00AF296092,F43GQ293237,WR21.001.000.96AF294094,Vir2899/841.00PTV-9PTV-7PTV-5PTV-6PTV-4PTV-8PTV-2PTV-3PTV-10PTV-11PTV-1AF296110,Sek49/99MrBayes,GTR+G+I230,000generations25%burninPTVP1,75sequencesAPTV8Jilin/2003PTV8Fuyu/2021PTV5D18/010.831.000.810.890.860.771.001.001.000.961.000.940.980.940.890.820.790.710.630.531.001.000.980.991.001.000.961.001.000.1DQ249299,DHAV,03DAF327920,LjV-1,87-012L02971,HPeV-1,Harris1.00EU142040,SePV,HO-02-21AJ225173,AEV,CalnekvaccinestrainM14707,HAV,HM-1751.00AY563023,ASV,TW90AAY064708,SSV,SV-22383AF406813,PSV,PEV-8V131.001.00K02121,HRV-BHRV-141059L24917,HRV-A,HRV-1611757EF186077,HRV-C,HRV-QPM1.000.89AF202194,SEV-A1,A-2plaqueD00820,HEV-D,EV-70J670/71M33854,HEV-B,CVB-3NancyAF326766,SV-61631AF414372,EV-108N1251.00U22521,HEV-AEV-71BrCrV01149,HEV-C,PV-1MahoneyAF363453,PEV-B,PEV-9UKG/410/73DQ092769,BEV-1,LC-R4DQ092770,BEV-2,BEV-2611.001.001.00GQ179640,SalivirusNG-J1AB010145,AichivirusA846/88AB084788,BKVU-1EU787450,sw/S-1-HUN/2007/Hungary1.001.001.00X96871,Erbo,ERBV-1P1436-71FJ438902,HCoSV-A1FJ438907,HCoSV-B10.79FJ438908,HCoSV-D1FJ555055,HCoSV-E11.001.00DQ641257,SVV-001M81861,EMCV-RM20562,TMEVGDVII1.001.00X96870,ERAVPERVX00871,FMDVO1-KaufbeurenEU236594,BRBVEC111.001.001.001.000.750.74AF296100,PTV-1DS562/91AF296108,PTV2Vir6793/83AF296115,PTV6Vir3634/86AF296095,PTV10Vir460/88AF296119,PTV10Vir461/880.93AF296103,PTV1Vir1626/89AF296104,PTV1Vir1627/89AF296102,PTV1Vir2236/99AF296117,PTV621-SZAF294094,PTV9Vir2899/840.99AF296109,PTV2Vir480/87AF296112,PTV4Vir3764/86AF231767,Bozen654AF231768,Konratice0.98AF296111,PTV4Vir918-19/85AF296107,PTV2Vir6711-12/83AF296113,PTV4Vir2500/99AF296096,DresdenAf296088,PTV3O2bAF296089,PTV4PS36AF296091,PTV6PS371.00AF296087,PTV2T80AF296090,PTV5F26AF296092,PTV7F43AF231769,PTV1TalfanAJ011380,PTV1F65AF296093,PTV8UKG/173/74AF296118,PTV825-TVII1.000.961.001.001.00DuckhepatitisAvirusLjunganvirusHumanparechovirusSealpicornavirus(proposed)AvianencepholmyelitisvirusHepatitisAvirusAviansapelovirusSimiansapelovirusPorcinesapelovirusHumanrhinovirusBHumanrhinovirusAHumanrhinovirusC(proposed)SimianenterovirusAHumanenterovirusDHumanenterovirusBSimianenterovirusB(proposed)SimianenterovirusC(proposed)HumanenterovirusAHumanenterovirusCPorcineenterovirusB(proposed:Porcineenterovirus)Bovineenterovirus(proposed:BovineenterovirusA)Bovineenterovirus(proposed:BovineenterovirusB)Salivirus(proposed)AichivirusBovinekobuvirusPorcinekobuvirus(proposed)EquinerhinitisBvirusHumancosavirusA(proposed)HumancosavirusB(proposed)HumancosavirusD(proposed)HumancosavirusE(proposed)SenecaValleyvirusEncephalomyocarditisvirusTheilovirusEquinerhinitisAvirusFoot-and-mouthdiseasevirusBovinerhinitisBvirusPorcineteschovirusMrBayes,GTR+G+I5,234,000generations25%burninPicorna3D,68sequencesGenBankacc.no.,(sero-)type,strainSpeciesGenusAvihepatovirusParechovirusAquamavirus(proposed)TremovirusHepatovirusSapelovirusEnterovirusKobuvirusErbovirusCosavirus(proposed)SenecavirusCardiovirusAphthovirusTeschovirusB我國可能采取的措施首先進行流行病學調查。豬場還應堅持自繁自養，盡量減少外購豬的數量，而且要嚴格控制外購豬的質量。與此同時，還要加強飼養管理，特別要注意提高飼糧中能量飼料的供給，完善防寒保暖措施，提高豬群整體抗病能力。搞好豬舍的清潔衛生和消毒工作，圈舍糞尿及垃圾要天天去除，并堅持對圈舍固定時間消毒。病毒在紫外線和日光下容易死亡，在豬舍內適當地加強光照，安裝紫外燈可殺滅有效距離內的病毒，保持地面枯燥也有一定的作用。我國可能采取的措施豬場一旦感染發病，除用抗菌藥物防止細菌繼發感染外，還要采取隔離措施，防止發病豬舍的病毒傳到健康舍。要控制人員串舍，妥善處理病豬糞便，禁止貓狗肆意活動，消滅老鼠，趕走飛鳥，及時用藥，隨時去除病豬或疑似病豬。目前，國內對豬捷申病尚無有效的治療方法，也無特效抗病毒藥物，只有采取綜合防制措施，才會有效降低發病率和死亡率。考慮研制疫苗。研制疫苗的優缺點由于捷申病毒血清型多樣，使開發一種針對所有捷申病毒血清型的疫苗變得困難。在中歐和馬達加斯加地區發生高死亡率時期接種的疫苗，使當時的疾病得到了有效的控制。國外具有成功研制疫苗的經驗。目前有針對PTV-1型細胞培養病毒的活疫苗和滅活疫苗。國內主要病毒型為PTV-8。該病毒易于培養，這為該病毒疫苗的研制創造了條件。疫苗的初步研制利用現有的PTV-8研制了疫苗，進行了豬體實驗，取得良好效果。聯合疫苗的研制現有的PTV-8可以很好的研制了疫苗，而且培養比較容易，毒價也很高，因此可以充分利用PTV-8，改造為載體，用其表達FMDV或者PCV2的抗原，制作聯苗。PTV-8作為國內流行的病毒株，可以和其他病原如PRRSV，FMDV，PPV，PCV2等制作滅活病毒聯合疫苗，很有前景。正如犬八聯一樣，如果在豬上做出八聯疫苗，那將具非同尋常的意義。七、國內主要豬病流行情況1.豬繁殖與呼吸綜合征該病從1995年在我國首次發現以來，歷經十幾年流行，流行病學的特點已發生重大變化。1997年的PRRS，病毒毒力異常強大，在20余天中使一個400余頭母豬的豬場流產130余窩，死亡母豬106頭，并且涉及到保育豬，種公豬。其后似乎平靜了幾年，至2005年別離到高致病性變異株，開始了又一輪的流行，但PRRSV的致病性并未超過初始流行時的毒力。至2021年，該病流行進一步減弱，相關數據說明，該病的發病率應在30％〔占總發病率〕，并且大局部發病的元兇是滅活苗，自家苗，高效致病性活疫苗，發病后假設無繼發感染，死亡率＜10％。上述的事實昭示了疫病的流行的普遍規律：任何新的病原微生物經過一段時空的流行后最終會與寄主共處穩態〔系統論中表示系統存在表征的名詞〕，而無論它怎樣變異。人們都將PRRSV作為疫病流行的原發病，實際呢？生息繁衍是所有生物生存的第一要務，PRRSV亦不例外。能與豬群共處穩態的PRRSV不會主動打破穩態，因為只有穩態才能實現其要務。業道，野豬普遍攜帶PRRSV，但從不發病的事實亦反證了這一點。豬都沒有了，PRRSV何以依附？這是其一；其二，臨診經驗說明，但凡發生PRRSV均是系統內其它環境因素打破了這種穩態引起的。這些因素中最主要的是霉菌毒素，其次是熱應激，低劣的舍內空氣或其他大環境等。豬瘟豬瘟的困擾是一個陳舊但而又沉重的話題。豬瘟仍然是我國的第一大流行性疫病。相關數據說明，送檢樣本中，豬瘟抗體合格率只有70％。眾所周知群體抗體合格率在80％，發生疫病流行的可能性不大，但難免有散發病例出現。假設低于80％，那么將面臨流行的壓力；送檢的單位多為規?；i場，因此，這種結果只能說明規?；i場的免疫狀況并不是很好。農村的專業戶與散養戶仍然是中國養豬業的主體，他們的情況又如何呢？在湖南，江西，廣西，湖北造訪過不少這樣的養豬人，特別是那些專買仔豬育肥的養豬人，其中許多人根本就沒有接種豬瘟疫苗的意識，更沒有送檢