本文格式為Word版，下載可任意編輯——MTT試驗跟蹤總結MTT試驗

MTT試驗第一階段細胞培養：細胞傳代與凍存…（此處略，蘋果你已會！）

MTT試驗其次階段（自己總結）

細胞種板：往96孔板中接種適合數量的細胞，并保證細胞在96孔板小孔中均勻分布，正常生長，是MTT試驗成功的首要條件。

主要步驟：

（1）.細胞生長：保證細胞處于對數生長期，簡而言之就是將已基本鋪滿培養瓶底的細胞進行消化，但不傳代，就是將舊的培養基換掉，讓貼壁的細胞懸浮，并培養一天。此時細胞處于對數生長期，細胞活力最好，有利于MTT試驗的結果。

（2）.細胞消化：將昨天的細胞吸去舊的培養基（將死細胞吸走，可用過濾滅菌的PBS溶液輕輕沖洗細胞），參與胰酶消化，隨后參與適合培養基（不宜過多，勿將細胞稀釋的過稀，達不到種板所需的細胞濃度要求）。切記利用吹打管將細胞吹打均勻（大量細胞會聚集在一起，細胞分散不均，吹打不勻會影響細胞計數的確鑿性及隨后種板的均一性）；但吹打過猛過多也會影響細胞活力。

（3）.細胞計數：計數之前，應用75%酒精將計數器其載玻片擦拭清白，以免上面殘留雜質影響細胞計數。取一小滴（估計20ul左右）吹打均勻的細胞培養液沿細胞計數器上端凹槽輕輕緩慢打出滴下，此時小液滴會自動（虹吸原理）鋪滿細胞計算器的上部小方塊（如圖1）；將細胞計算器放置于顯微鏡下觀測計數，找到左上、左下、右上、右下各4塊16格的區域（如圖2），數下各塊區域的細胞數目，并記錄數據（計數原則：當有細胞壓16特別線時，記上不記錄下來，記左不記右）。得到細胞濃度。

計算公式為：細胞濃度=[（A1+A2+A3+A4）/4]*104/ml

（4）.細胞稀釋：就是將細胞稀釋到接種于96孔板時細胞接種數目濃度。每孔參與200ul，細胞數目（5000左右，個人認為）。在稀釋細胞是既要考慮接種濃度，也要考慮接種總共所需的細胞培養液體積（避免細胞濃度適合，但體積不夠接種于所需加樣的小孔）

（5）.細胞加樣：每次加樣前需要將細胞培養液振蕩，加幾孔最好吹打一下細胞培養液（防止有的細胞沉降），目的是將細胞混合均勻，保證種板的均一性。根據自己設計的96孔板加樣方式，一般一種藥物的濃度可配6個濃度，每個濃度加5個重復孔，另外需設有對照組，空白組（一般狀況下96孔板外圍的36孔不種細胞，參與一致體積的PBS溶液，從而減少內部的60孔中細胞培養液的揮發，稱之為邊緣效應）（如圖3）。

（6）.96孔板觀測：當將細胞順利接種到對應小孔中后，將96孔板放置于顯微鏡下觀測

各孔中細胞狀態及分布是否均勻等（保證為正常存活的細胞，在細胞形態學上符合MTT要求，保證MTT結果的可靠性，也在細胞形態學上論證MTT細胞試驗的結果）。（7）.細胞再培養：將96孔板重新放回孵溫箱中培養（設定培養時長為24h及48小時），但可根據細胞的生長狀況重新設定加藥的時間。一般在種板的其次天即可加藥。

蘋果，藥物滅菌問題還有MTT配制相關的問題，我在查查，然后在問問。MTT試驗第三階段

（1）.藥物滅菌：目前滅菌方式有煮沸滅菌、高壓滅菌、紫外滅菌、過濾滅菌、輻射滅菌、無菌制備等。（自己看看吧），可以先凍干在再紫外滅菌試試（紫外照射會破換紫杉醇結構嗎？或者會影響納米晶體的物理性質嗎？）

（2）.梯度藥物溶液配制：首先查閱文獻找到紫杉醇的IC50值。兩種梯度配制方法（一般5-6個梯度）：以IC50作為中間梯度，上下各配兩梯度，梯度濃度一般相差10倍；或將IC50作為最高濃度梯度，往下配制幾個梯度濃度（確保無菌操作）。此外配制藥物溶液所用培養基是否參與血清，眾說紛紜，培養基是保證細胞存活的基本條件，血清參與是保證細胞增殖的要求，個人覺得應用含血清的培養基來配制溶液。

（3）.96孔板加藥：加藥時，應將舊培養基全部吸掉，將96孔板呈30°角放置，利于將培養基吸盡，且不影響細胞。具體操作：一個梯度濃度的5個孔吸掉培養基，再往5個孔中參與含藥物的培養基（防止在將全部孔中的舊培養基吸掉的過程中，前面孔中細胞由于缺少培養基而干死）。加樣量為200ul。MTT溶液配制

MTT，商品名：噻唑藍，是一種黃顏色的染料，為強致癌物質，在稱取過程中需要特別防備，蘋果！MTT濃度為5mg/ml，一般每孔加20ul，因此一塊板最多需要1200ul，即1.2ml。可多配制，錫箔紙包住避光4℃保存。MTT配制多用生理鹽水或PBS溶液。MTT水溶性不好（雖為季銨鹽類，但結構式周邊苯環及噻唑無形之中降低其水中的溶解度），50mg溶于10ml水，超聲半天都不能完全溶解（這個問題我現在還沒找到解決方法，蘋果）。

MTT試驗第四階段

（1）.96孔板加MTT：一般都是將加藥后的96孔板培養至24小時，使藥物充分對細胞進行作用。而實際狀況下有些藥物會很快抑制細胞生長，見效時間短，那么在這種狀況下再將藥物與細胞放置培養24小時的話，最終的結果中梯度濃度的腫瘤抑制率上就不會有梯度效果，無法計算IC50，更無法知曉哪個濃度為最有效濃度或最接近有效濃度。判斷上述現象可以通過細胞形態學來，即將96孔板放置于顯微鏡下進行觀測，假使發現細胞大量死亡應終止培養，加MTT（狀況不可一概而論）。

具體操作：在適合的時間點吸掉舊培養基，假使你的藥物與MTT可以反應（將MTT還原成甲贊）,用無菌的PBS（200μl-300μl）沖洗加藥孔，沖洗應注意勿將活細胞帶走。清洗完后，每孔在參與100μl完全培養基，隨后每孔參與20-50μlMTT,對照組與空白組也執行以上操作。加完MTT將96孔板放入孵溫箱培育4h，拿出后先離心，防止吸掉液體時也將甲贊沉淀吸走，影響最終的OD值。

腫瘤細胞抑制率=1-（加藥孔OD-空白孔OD）/（對照孔OD-空白空OD）

一般狀況下，最終96孔板顏色越深，該濃度下該藥物的腫瘤抑制率越低。但也會有其它原因造成紫色加深，例如染菌、藥物自身與MTT發生反應等。前期種板的細胞數目的均一性，加樣的確鑿性等也會影響最終的試驗結果。

Eto不同劑型癌細胞抑制率比較100FreeEtoEtoNPsPEG-EtoNPs80A549抑制率604020232345123451234CAAAA