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文檔簡介
重組DNA轉變受體細胞后,須在不一樣樣樣水平進步行優選,以差別轉變子與非轉變子、重組子與非重組子以及判斷所需的特異性重組子。在轉變過程中,其實不是每個受體細胞都被轉變;即便獲取轉變細胞,也其實不是都含有目的基因,所以需采納有效方法進行優選。優選的方法包含依據遺傳表型優選、限制性內切酶分析優選、核酸探針優選、PCR優選等。本實驗采納遺傳表型優選中的抗生素平板優選或α互補優選的方法。一、抗生素平板優選【實驗原理】目標基因是
Kan的抗性基因,而載體含
Amp
的抗性基因,所以在含有
Amp
和Kan的培育基中生
長
的
菌
落
即
為
陽
性
菌
落
。【操作步驟】1.制備含有Amp和Kan的LB瓊脂培育板2.將
100μl
轉變菌液用無菌涂布器平均涂布于含有
Amp
和
Kan
培育板上,
37℃培育
12-16h
。3.在含有體
Amp和培
Kan培育板上能生長的菌落即為陽性重組質粒。并將其接種于含養基2ml中培育
Kan的8-16h
LB液。4.小量制備質粒,限制性酶切分析進一步判斷。二、α互補優選【實驗原理】合用于含有半乳糖苷酶基因(LacZ)的載體,如pUC系列等,其原理是:載體含有LacZ的調控序列和N端146個氨基酸的編碼信息。在這個編碼區中插入了一個多克隆位點。當這類載體進入可編碼
β-半乳糖苷酶
C端部分序列的宿主細胞后(質粒和宿主細胞編碼的片段各自都沒有酶活性),它們可以融為一體,形成擁有酶學活性的蛋白質,這類現象叫
α互補。由
α互補而產生的
Lac+
細菌在呈色底物
5-溴-4-
氯-3-
吲哚-β-半乳糖苷(
X-gal
)和引誘劑異丙基硫代-β-D-半乳糖苷(IPTG)存在下形成藍色菌落。當外源DNA插入到質粒的多克隆位點后,以致產生無α互補能力的氨基端片段。所以,帶有重組質粒的細菌形成白色菌落。經過呈色反應即可初步鑒別可能帶有重組質粒的菌落。經過小量制備質粒DNA進行限制酶切分析,即可確立這些質粒的結構?!驹噭?.X-gal(20mg/ml):將20mgX-gal溶于lml二甲基甲酰胺中,-20℃避光保留。2.IPTG(200mg/ml):將1gIPTG溶于4ml去離子雙蒸水中,定容至5ml,用0.22μm過濾器除菌,-20℃保存備用。【操作步驟】1.制備含相應抗生素的瓊脂平板。2.于平板表面加X-gal40μl和IPTG4μl,并用無菌玻璃涂布器將試劑平均涂布于整個平板表面。37℃靜置lh。3.將100μl轉變的菌液涂布于平板表面,置37℃培育箱20min后,倒置平板連續培育12~16h。4.中斷培育后,將平板靜置4℃4h,使藍色充分顯現,平皿上顯示藍色和白色兩種菌落。5.挑取白色菌落置2mlLB(含相應抗生素)液體培育基中,37℃搖床培育8~12h。6.提取質粒,以限制性酶切分析進一步判斷。3.重組質粒的判斷方案一菌落PCR(1制備PCR混雜液:(2用經滅菌的10μl槍頭(不用牙簽)挑去白色菌落,迅速地使挑取物溶在上述混雜液中。(3蓋上離心管得蓋子,在開水上溫育10min。(4將步驟⑶的樣品冷卻至室溫,離心數秒,此后于管中加入TaKaRarTaq酶0.25ul。(5按以下條件進行PCR反應:94℃預變性3min;此后進行30個循環反應,其溫度循環條件為:94℃變性1min,57℃退火1min,72℃延長1min;循環結束后72℃再延長5min。(6取5μlPCR產物在1%瓊脂糖凝膠進步行電泳檢測。方案二質粒PCR1.堿裂解法少許制備質粒DNA(1用離心管采集4ml在LB培育基(含Amp)中培育過夜的菌液,14000rpm離心30秒,棄盡上清。(2用250μl已加入RNaseA1的BufferS1充分懸浮細菌積淀。(3加入250μlBufferS2,平和但充分地上下翻轉混雜4-6次,此步驟不宜超出5min。*BufferS2使用后應馬上蓋緊瓶蓋,省得空氣中的CO2中和BufferS2中的NaOH,降低溶菌效率。(4加入400μlBufferS3,平和地上下翻轉8-10次,室溫靜置2min,14000rpm離心10min。*若離心后凝結塊未積淀到離心管底部,應再上下翻轉數次,12000g離心3min。(5將DNA-prepTube置于2-mlMicrofugeTube中,將步⑷中的混雜液移入DNA-prepTube中,5500rpm離心1min。(6棄濾液,將DNA-prepTube置回到原2-mlMicrofugeTube中,加入500μlBufferW1,5500rpm離心1min。(7棄濾液,將W2,5500rpm
DNA-prepTube置回到原2-mlMicrofugeTube中,加入700μl已加無水乙醇的離心1min,以相同的方法再用700μl已加無水乙醇的Buffer
BufferW2沖刷一次。一般有三種判斷方法
:1陽性克隆培育
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